| 摘要 | 第1-6页 |
| Abstract | 第6-13页 |
| 第一章 前言 | 第13-29页 |
| 1 海洋生物活性物质研究概况 | 第13-14页 |
| 2 多糖的研究 | 第14-16页 |
| ·海洋生物多糖 | 第14-16页 |
| ·海藻多糖 | 第15页 |
| ·海洋微生物多糖 | 第15-16页 |
| 3 海洋动物多糖 | 第16-23页 |
| ·海洋动物多糖的提取、分离和纯化 | 第16-20页 |
| ·海洋动物多糖的提取 | 第16-17页 |
| ·海洋动物多糖的分离纯化 | 第17-18页 |
| ·海洋动物多糖的结构分析 | 第18-20页 |
| ·海洋动物多糖的活性 | 第20-23页 |
| ·免疫调节作用 | 第20-21页 |
| ·抗肿瘤作用 | 第21页 |
| ·抗凝血作用 | 第21-22页 |
| ·抗病毒、抗菌作用 | 第22页 |
| ·降糖、降血脂作用 | 第22-23页 |
| ·其他活性 | 第23页 |
| 4 章鱼和章鱼多糖 | 第23-27页 |
| ·章鱼概述 | 第23-27页 |
| ·外部特征 | 第23-24页 |
| ·内部组织特点 | 第24-25页 |
| ·先天优势 | 第25-27页 |
| ·章鱼多糖的研究进展 | 第27页 |
| 5 本课题的立题背景和研究思路 | 第27-29页 |
| 第二章 章鱼多糖的提取和性质研究 | 第29-45页 |
| 引言 | 第29页 |
| 1 材料与仪器 | 第29-30页 |
| 2 实验方法 | 第30-35页 |
| ·冷水提取短蛸粗多糖 | 第30页 |
| ·酶法提取短蛸粗多糖 | 第30-31页 |
| ·粗多糖脱蛋白方法选择 | 第31-32页 |
| ·sevage法脱蛋白 | 第31页 |
| ·等电点法脱蛋白 | 第31-32页 |
| ·糖含量测定 | 第32页 |
| ·蛋白含量测定 | 第32-33页 |
| ·糖醛酸含量测定 | 第33页 |
| ·硫酸根含量测定 | 第33-34页 |
| ·重均相对分子质量测定 | 第34页 |
| ·单糖组成测定 | 第34-35页 |
| 3 实验结果 | 第35-43页 |
| ·正交试验结果分析 | 第35-36页 |
| ·粗多糖脱蛋白结果 | 第36-37页 |
| ·糖含量测定结果 | 第37-38页 |
| ·蛋白含量测定结果 | 第38页 |
| ·糖醛酸含量测定结果 | 第38-39页 |
| ·硫酸根含量测定结果 | 第39-40页 |
| ·纯度及分子量测定 | 第40-42页 |
| ·单糖组成测定结果 | 第42-43页 |
| 4 本章小结 | 第43-45页 |
| 第三章 短蛸多糖的分离纯化 | 第45-60页 |
| 引言 | 第45页 |
| 1 材料和仪器 | 第45-46页 |
| 2 实验方法 | 第46-47页 |
| ·WBP、WFP、EBP和EFP的凝胶柱层析 | 第46页 |
| ·离子交换分离层析 | 第46页 |
| ·WFP-2b、EFP-1a和EFP-2a的理化性质测定 | 第46页 |
| ·糖含量测定 | 第46页 |
| ·蛋白含量测定 | 第46页 |
| ·糖醛酸含量测定 | 第46页 |
| ·硫酸根含量测定 | 第46页 |
| ·纯度及分子量范围测定 | 第46-47页 |
| ·单糖组成测定 | 第47页 |
| ·红外光谱测定 | 第47页 |
| 3 结果与讨论 | 第47-58页 |
| ·各多糖的凝胶柱层析测定结果 | 第47-49页 |
| ·离子交换分离层析测定结果 | 第49-52页 |
| ·WFP-2b、EFP-1a和EFP-2a的理化性质测定结果 | 第52-54页 |
| ·糖含量测定结果 | 第52页 |
| ·蛋白含量测定结果 | 第52-53页 |
| ·糖醛酸含量测定结果 | 第53页 |
| ·硫酸根含量测定结果 | 第53-54页 |
| ·纯度及分子量范围测定 | 第54-55页 |
| ·单糖组成测定结果 | 第55-57页 |
| ·IR图谱及其解析 | 第57-58页 |
| 4 本章小结 | 第58-60页 |
| 第四章 短蛸多糖EFP-1a的结构研究 | 第60-74页 |
| 引言 | 第60页 |
| 1 实验材料与仪器 | 第60页 |
| 2 实验方法 | 第60-62页 |
| ·性质分析 | 第60-61页 |
| ·碘液滴定 | 第61页 |
| ·α-1,4淀粉酶水解 | 第61页 |
| ·单糖组成分析 | 第61页 |
| ·IR分析 | 第61页 |
| ·甲基化分析 | 第61-62页 |
| ·核磁共振分析 | 第62页 |
| ·EFP-1a的硫酸酯化 | 第62页 |
| 3 结果与讨论 | 第62-73页 |
| ·性质分析结果 | 第62-63页 |
| ·碘液滴定 | 第62页 |
| ·α-1,4淀粉酶水解 | 第62-63页 |
| ·单糖组成分析结果 | 第63页 |
| ·IR分析结果 | 第63页 |
| ·EFP-1a的GC-MS分析结果 | 第63-67页 |
| ·核磁共振分析结果 | 第67-72页 |
| ·EFP-1a的~1H-NMR图谱分析 | 第67-68页 |
| ·EFP-1a的~(13)C-NMR图谱分析 | 第68-69页 |
| ·EFP-1a的~1H-~1HCOSY图谱分析 | 第69-70页 |
| ·EFP-1a的~(13)C-~1HHMQC图谱分析 | 第70-71页 |
| ·EFP-1a的~(13)C-~1HHMBC图谱分析 | 第71-72页 |
| ·硫酸酯化程度分析结果 | 第72-73页 |
| 4 本章小结 | 第73-74页 |
| 第五章 短蛸多糖WFP-2b的结构研究 | 第74-92页 |
| 引言 | 第74页 |
| 1 实验材料与仪器 | 第74-75页 |
| 2 实验方法 | 第75-76页 |
| ·WFP-2b的结构分析 | 第75页 |
| ·WFP-2b降解条件的确定 | 第75页 |
| ·WFP-2b的水解与分离 | 第75页 |
| ·WFP-2b降解片段单糖组成分析 | 第75页 |
| ·WFP-2b降解寡糖的ESI-MS分析 | 第75页 |
| ·WFP-2b3的核磁共振波谱解析 | 第75-76页 |
| ·WFP-2b的硫酸酯化修饰 | 第76页 |
| 3 结果与讨论 | 第76-91页 |
| ·WFP-2b的结构研究 | 第76-83页 |
| ·WFP-2b的水解及分离 | 第76-77页 |
| ·WFP-2b降解片段的单糖组成分析及质谱分析结果 | 第77-83页 |
| ·WFP-2b3三糖单元的核磁共振波谱解析 | 第83-91页 |
| ·WFP-2b3的~(13)CNMR分析结果 | 第83-84页 |
| ·WFP-2b3的~1HNMR分析结果 | 第84-85页 |
| ·WFP-2b3的~1H-~(13)CHMQC分析结果 | 第85-87页 |
| ·WFP-2b3的~1H-~1HCOSY分析结果 | 第87-88页 |
| ·WFP-2b3的~1H-~(13)CHMBC分析结果 | 第88-91页 |
| 4 本章小结 | 第91-92页 |
| 结语 | 第92-94页 |
| 创新点 | 第94-95页 |
| 参考文献 | 第95-102页 |
| 致谢 | 第102-103页 |
| 个人简历及参与发表的学术论文 | 第103页 |
