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R9-FOXM1-N重组蛋白批量纯化及其抑瘤效应研究

摘要第5-6页
Abstract第6-7页
第1章 绪论第12-17页
    1.1 抗肿瘤蛋白类药物第12页
    1.2 细胞穿膜肽第12-13页
    1.3 转录因子FOXM1第13-14页
    1.4 蛋白表达系统第14-15页
    1.5 本论文的研究背景及内容第15-17页
第2章 R9-FOXM1-N的批量纯化第17-27页
    2.1 前言第17-18页
    2.2 实验材料及实验仪器第18-19页
    2.3 实验方法第19-24页
        2.3.1 原核表达载体的构建第19-20页
        2.3.2 CaCl_2制备感受态细胞第20页
        2.3.3 质粒小提第20-21页
        2.3.4 胶回收法纯化DNA第21页
        2.3.5 DNA的琼脂糖凝胶电泳第21-22页
        2.3.6 His-tag融合蛋白的诱导和纯化流程第22页
        2.3.7 表达蛋白的SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳第22-24页
    2.4 实验结果第24-25页
        2.4.1 重组表达质粒pHis-FOXMl(l-234aa)-R9的构建第24-25页
        2.4.2 R9-FOXM1-N重组蛋白的纯化第25页
    2.5 讨论第25-27页
第3章 R9-FOXM1-N抑制FOXM1的转录活性第27-38页
    3.1 前言第27页
    3.2 实验材料及实验仪器第27-28页
    3.3 实验方法第28-34页
        3.3.1 细胞培养第28-29页
        3.3.2 真核表达载体pCMV-FOXM1-N(1-234aa)的构建第29-30页
        3.3.3 荧光素酶报告基因检测实验第30页
        3.3.4 Western Blotting第30-34页
        3.3.5 质粒大提第34页
    3.4 实验结果第34-37页
        3.4.1 重组蛋白R9-GFP可有效进入肿瘤细胞第34-35页
        3.4.2 肿瘤细胞中过表达FOXM1氮端可抑制FOXM1的转录活性第35-36页
        3.4.3 R9-FOXM1-N可抑制肿瘤细胞中的FOXM1转录活性第36-37页
    3.5 讨论第37-38页
第4章 R9-FOXM1-N抑瘤效应第38-45页
    4.1 前言第38-39页
    4.2 实验材料及实验仪器第39-40页
    4.3 实验方法第40-42页
        4.3.1 细胞传代培养第40页
        4.3.2 细胞的复苏第40页
        4.3.3 细胞的冻存第40-41页
        4.3.4 MTT法检测细胞活性第41页
        4.3.5 流式细胞仪检测细胞周期第41-42页
    4.4 实验结果第42-44页
        4.4.1 R9-FOXM1-N对不同类型肿瘤细胞增殖的抑制作用第42页
        4.4.2 R9-FOXM1-N重组蛋白肿瘤细胞形态影响第42-43页
        4.4.3 R9-FOXM1-N重组蛋白对细胞周期的影响第43-44页
    4.5 讨论第44-45页
第5章 蛋白的PEG化第45-51页
    5.1 前言第45-48页
        5.1.1 蛋白类药物的PEG化修饰第45-46页
        5.1.2 商品化溶菌酶的PEG化条件优化及其纯化第46-48页
    5.2 实验材料及实验仪器第48页
    5.3 实验方法第48-49页
        5.3.1 PEG化的反应条件第48-49页
        5.3.2 考马斯亮蓝染色第49页
    5.4 实验结果第49-50页
        5.4.1 不同PEG试剂的PEG反应第49页
        5.4.2 mPEG-NHS在不同pH的缓冲液液的PEG化第49-50页
        5.4.3 mPEG-NHS与溶菌酶不同摩尔比例PEG反应第50页
    5.5 讨论第50-51页
第6章 总结与展望第51-52页
    6.1 总结第51页
    6.2 展望第51-52页
参考文献第52-57页
附录A 英文缩写第57-58页
附录B 常用缓冲液和试剂配方第58-60页
攻读学位期间发表的论文第60-61页
致谢第61页

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