摘要 | 第8-11页 |
Abstract | 第11-14页 |
第一章 绪论 | 第15-47页 |
1.1 纳米技术与癌症治疗 | 第15-20页 |
1.1.1 癌症简介及现状 | 第15页 |
1.1.2 癌症治疗方法简介 | 第15-17页 |
1.1.3 纳米材料在癌症治疗方面应用现状 | 第17-20页 |
1.2 癌症的光动力学疗法 | 第20-30页 |
1.2.1 光动力学疗法简介 | 第20-21页 |
1.2.2 癌症光动力学疗法存在的主要问题 | 第21页 |
1.2.3 纳米材料在癌症光动力学疗法中的应用 | 第21-30页 |
1.3 癌症的光热疗法 | 第30-34页 |
1.3.1 光热疗法简介 | 第30页 |
1.3.2 癌症光热疗法存在的主要问题 | 第30页 |
1.3.3 纳米材料在癌症光热疗法中的应用 | 第30-34页 |
1.4 本论文的选题背景和研究意义 | 第34-35页 |
参考文献 | 第35-47页 |
第二章 近红外纳米光敏剂诱导线粒体活性氧爆发多米诺效应用于癌症治疗 | 第47-76页 |
2.1 引言 | 第47-49页 |
2.2 实验部分 | 第49-55页 |
2.2.1 试剂与仪器 | 第49页 |
2.2.2 NaYF_4:20%Yb~(3+),0.2%Tm~(3+)上转换纳米晶体的合成 | 第49-50页 |
2.2.3 UCNPs@TiO_2核壳纳米颗粒的合成 | 第50页 |
2.2.4 UCNPs@TiO_2-TPP和UCNPs@TiO_2-TPP-IR806的合成 | 第50页 |
2.2.5 UCNPs@TiO_2-TPP-HE的合成 | 第50-51页 |
2.2.6 细胞培养 | 第51页 |
2.2.7 线粒体共定位实验 | 第51页 |
2.2.8 细胞摄取和内在化途径 | 第51页 |
2.2.9 UCNPs@TiO_2-TPP-IR806的细胞内运输 | 第51-52页 |
2.2.10 ICP-AES | 第52页 |
2.2.11 细胞内检测O_2~(·-)的产生 | 第52-53页 |
2.2.12 细胞毒性实验 | 第53页 |
2.2.13 检测线粒体膜电位(ΔΨ_m) | 第53页 |
2.2.14 细胞凋亡 | 第53-54页 |
2.2.15 Caspase 3 的激活 | 第54页 |
2.2.16 肿瘤异种移植老鼠模型的建立 | 第54页 |
2.2.17 活体肿瘤治疗实验 | 第54-55页 |
2.3 结果与讨论 | 第55-70页 |
2.3.1 纳米光敏剂的合成与表征 | 第55-57页 |
2.3.2 化学体系验证ROS产生 | 第57-58页 |
2.3.3 线粒体共定位 | 第58-59页 |
2.3.4 细胞摄取及内在化途径分析 | 第59-60页 |
2.3.5 纳米光敏剂细胞内转运情况 | 第60-62页 |
2.3.6 检测活细胞线粒体内ROS的爆发 | 第62页 |
2.3.7 ROS爆发实时成像 | 第62-63页 |
2.3.8 纳米光敏剂在活细胞中的治疗效果 | 第63-64页 |
2.3.9 线粒体膜电位 | 第64-65页 |
2.3.10 细胞死亡机制研究 | 第65-67页 |
2.3.11 Caspase 3 激活实验 | 第67页 |
2.3.12 纳米光敏剂活体肿瘤治疗应用 | 第67-68页 |
2.3.13 组织免疫荧光染色 | 第68-70页 |
2.4 结论 | 第70页 |
参考文献 | 第70-76页 |
第三章 细胞核靶向的纳米/分子双光敏剂用于耐药性肿瘤治疗 | 第76-97页 |
3.1 引言 | 第76-78页 |
3.2 实验部分 | 第78-82页 |
3.2.1 试剂与仪器 | 第78页 |
3.2.2 NaYF_4:20%Yb~(3+),0.1%Er~(3+),0.2%Tm~(3+)上转换纳米晶体的合成 | 第78-79页 |
3.2.3 UCNPs@TiO_2核壳纳米粒子的合成 | 第79页 |
3.2.4 UCNPs@TiO_2-Ce6-TAT的合成 | 第79-80页 |
3.2.5 细胞培养 | 第80页 |
3.2.6 细胞核共定位 | 第80页 |
3.2.7 UCNPs@TiO_2-Ce6-TAT的细胞内摄取 | 第80页 |
3.2.8 细胞内治疗效果 | 第80-81页 |
3.2.9 细胞核内DNA损伤实验 | 第81-82页 |
3.2.10 肿瘤异种移植老鼠模型的建立 | 第82页 |
3.2.11 活体肿瘤治疗实验 | 第82页 |
3.3 结果与讨论 | 第82-92页 |
3.3.1 细胞核靶向的双光敏剂的合成和表征 | 第82-83页 |
3.3.2 Ce6及TAT的定量 | 第83页 |
3.3.3 化学体系验证多种ROS的产生 | 第83-84页 |
3.3.4 共定位和细胞内追踪实验 | 第84-87页 |
3.3.5 细胞中核靶向的双光敏剂的治疗效果评估 | 第87-88页 |
3.3.6 验证DNA损伤实验 | 第88-90页 |
3.3.7 活体肿瘤治疗应用 | 第90-91页 |
3.3.8 组织免疫荧光染色 | 第91-92页 |
3.4 结论 | 第92页 |
参考文献 | 第92-97页 |
第四章 基于化学发光能量转移的光动力学系统用于深层组织转移瘤治疗 | 第97-109页 |
4.1 引言 | 第97-99页 |
4.2 实验部分 | 第99-102页 |
4.2.1 试剂与仪器 | 第99页 |
4.2.2 制备二氧化硅球 | 第99页 |
4.2.3 双层SiO_2(double-layer SiO_2, dSiO_2)的合成 | 第99-100页 |
4.2.4 制备HMSNs | 第100页 |
4.2.5 HMSN氨基化(HMSNs-NH_2) | 第100页 |
4.2.6 连接Gox(HMSN-Gox) | 第100页 |
4.2.7 连接光敏剂Ce6(HMSN-Gox-C6) | 第100页 |
4.2.8 装载PFC及CPPO(HMSN@PFC/CPPO-Gox-Ce6) | 第100-101页 |
4.2.9 细胞培养 | 第101页 |
4.2.10 纳米材料包覆细胞膜(HMSN@-Gox-Ce6/O_2@C) | 第101页 |
4.2.11 化学体系验证H_2O_2及~1O_2产生 | 第101页 |
4.2.12 细胞毒性MTT实验 | 第101-102页 |
4.3 结果与讨论 | 第102-106页 |
4.3.1 纳米探针的制备与表征 | 第102-104页 |
4.3.2 化学体系验证H_2O_2产生 | 第104-105页 |
4.3.3 化学体系验证~1O_2产生 | 第105页 |
4.3.4 细胞毒性MTT实验 | 第105-106页 |
4.4 结论 | 第106页 |
参考文献 | 第106-109页 |
第五章 DNA/金智能纳米机器用于肿瘤特异性的光声检测和光热治疗 | 第109-131页 |
5.1 引言 | 第109-111页 |
5.2 实验部分 | 第111-115页 |
5.2.1 试剂与仪器 | 第111页 |
5.2.2 金纳米粒子的合成 | 第111-112页 |
5.2.3 DNA结构 | 第112页 |
5.2.4 制备DNA /金纳米机器 | 第112-113页 |
5.2.5 化学体系验证弱酸性条件诱导的金聚集、光声成像和光热效应 | 第113页 |
5.2.6 凝胶电泳分析 | 第113页 |
5.2.7 细胞培养 | 第113页 |
5.2.8 肿瘤异种移植老鼠模型的建立 | 第113页 |
5.2.9 活体光声成像和光热成像 | 第113-114页 |
5.2.10 纳米材料体内的生物分布和排泄研究 | 第114页 |
5.2.11 活体肿瘤治疗实验 | 第114-115页 |
5.2.12 组织免疫荧光染色 | 第115页 |
5.3 结果与讨论 | 第115-126页 |
5.3.1 金纳米机器的合成与表征 | 第115-116页 |
5.3.2 弱酸诱导的 α-CD的释放 | 第116-117页 |
5.3.3 化学体系光热实验 | 第117-118页 |
5.3.4 化学体系PA成像 | 第118页 |
5.3.5 活体PA成像 | 第118-119页 |
5.3.6 α-CD功能验证 | 第119-122页 |
5.3.7 金纳米机器代谢实验 | 第122页 |
5.3.8 验证金纳米机器体内光热效应 | 第122-123页 |
5.3.9 活体肿瘤治疗实验 | 第123-124页 |
5.3.10 组织免疫荧光染色 | 第124-126页 |
5.4 结论 | 第126页 |
参考文献 | 第126-131页 |
攻读博士学位期间发表的学术论文及参与的课题 | 第131-134页 |
致谢 | 第134-135页 |