| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 缩写词表 | 第12-13页 |
| 第一章 绪论 | 第13-16页 |
| 1.1 前言 | 第13-14页 |
| 1.2 实验研究的目的及主要内容 | 第14-16页 |
| 第二章 大鼠脊髓神经元的鉴定及Ca SR的表达定位 | 第16-23页 |
| 2.1 前言 | 第16页 |
| 2.2 实验材料 | 第16-18页 |
| 2.2.1 实验主要试剂 | 第16-17页 |
| 2.2.2 实验试剂的配制 | 第17页 |
| 2.2.3 实验仪器 | 第17-18页 |
| 2.2.4 实验动物 | 第18页 |
| 2.3 实验方法 | 第18-19页 |
| 2.3.1 新生大鼠脊髓神经元的培养 | 第18-19页 |
| 2.3.2 免疫荧光法鉴定脊髓神经元 | 第19页 |
| 2.3.3 免疫荧光法观察CaSR在神经元中的表达 | 第19页 |
| 2.4 实验结果 | 第19-21页 |
| 2.4.1 脊髓神经元的培养 | 第19-20页 |
| 2.4.2 免疫荧光法鉴定脊髓神经元 | 第20-21页 |
| 2.4.3 CaSR在脊髓神经元中的表达定位 | 第21页 |
| 2.5 讨论 | 第21-23页 |
| 第三章 脊髓神经元缺氧复氧损伤模型的探究及建立 | 第23-32页 |
| 3.1 前言 | 第23页 |
| 3.2 实验材料 | 第23-28页 |
| 3.2.1 实验主要试剂 | 第23-24页 |
| 3.2.2 实验试剂的配制 | 第24-27页 |
| 3.2.3 实验仪器 | 第27页 |
| 3.2.4 实验细胞 | 第27-28页 |
| 3.3 实验方法 | 第28-29页 |
| 3.3.1 细胞缺氧复氧模型的建立 | 第28页 |
| 3.3.2 免疫印迹法检测CaSR蛋白的表达 | 第28-29页 |
| 3.4 统计学分析 | 第29页 |
| 3.5 实验结果 | 第29-30页 |
| 3.5.1 免疫印迹法检测CaSR蛋白的表达 | 第29-30页 |
| 3.6 讨论 | 第30-32页 |
| 第四章 CaSR在脊髓神经元缺氧复氧损伤中的作用 | 第32-39页 |
| 4.1 前言 | 第32页 |
| 4.2 实验材料 | 第32-33页 |
| 4.2.1 实验主要试剂 | 第32-33页 |
| 4.2.2 实验仪器 | 第33页 |
| 4.2.3 实验细胞 | 第33页 |
| 4.3 实验方法 | 第33-35页 |
| 4.3.1 细胞分组 | 第33页 |
| 4.3.2 免疫印迹法检测CaSR蛋白的表达 | 第33页 |
| 4.3.3 荧光定量PCR检测CaSR mRNA表达 | 第33-34页 |
| 4.3.4 细胞内游离钙浓度检测 | 第34-35页 |
| 4.4 统计学分析 | 第35页 |
| 4.5 实验结果 | 第35-37页 |
| 4.5.1 免疫印迹法检测各组CaSR蛋白的表达 | 第35页 |
| 4.5.2 荧光定量PCR检测CaSR mRNA的表达 | 第35-36页 |
| 4.5.3 细胞内游离钙浓度的测定 | 第36-37页 |
| 4.6 讨论 | 第37-39页 |
| 第五章 脊髓神经元在缺氧复氧损伤后的凋亡变化 | 第39-45页 |
| 5.1 前言 | 第39页 |
| 5.2 实验材料 | 第39-40页 |
| 5.2.1 实验主要试剂 | 第39页 |
| 5.2.2 实验仪器 | 第39-40页 |
| 5.2.3 实验细胞 | 第40页 |
| 5.3 实验方法 | 第40页 |
| 5.3.1 TUNEL法检测细胞凋亡 | 第40页 |
| 5.3.2 免疫印迹法检测Caspase-3、Bax、Bcl-2 蛋白表达水平 | 第40页 |
| 5.4 统计学分析 | 第40页 |
| 5.5 实验结果 | 第40-42页 |
| 5.5.1 各组脊髓神经元Tunel染色的比较 | 第40-41页 |
| 5.5.2 免疫印迹法检测各组Caspase-3、Bax、Bcl-2 的表达 | 第41-42页 |
| 5.6 讨论 | 第42-45页 |
| 结论与展望 | 第45-47页 |
| 参考文献 | 第47-54页 |
| 综述 | 第54-70页 |
| 参考文献 | 第61-70页 |
| 在学期间发表的学术论文及其它学术成果 | 第70-71页 |
| 致谢 | 第71页 |
