摘要 | 第4-6页 |
abstract | 第6-7页 |
英文缩略表 | 第10-11页 |
引言 | 第11-13页 |
第1章 CYP1A1启动子区甲基化与ADIH关系 | 第13-47页 |
1.1 材料与方法 | 第13-23页 |
1.1.1 主要材料 | 第13-14页 |
1.1.2 耗材前处理及试剂配制 | 第14页 |
1.1.3 细胞培养 | 第14-15页 |
1.1.4 药物处理及细胞培养分组 | 第15-16页 |
1.1.5 细胞上清LDH检测 | 第16-17页 |
1.1.6 细胞上清SOD活性检测 | 第17页 |
1.1.7 细胞上清MDA检测 | 第17页 |
1.1.8 CYP1A1蛋白含量及DNA甲基转移酶蛋白含量和活性检测 | 第17页 |
1.1.9 细胞内CYP1A1和DNA甲基转移酶mRNA表达检测 | 第17-18页 |
1.1.10 亚硫酸盐测序法检测CYP1A1启动子区CpG岛甲基化 | 第18-21页 |
1.1.11 MSP法检测CYP1A1启动子区CpG岛甲基化 | 第21-23页 |
1.1.12 统计学分析 | 第23页 |
1.2 结果 | 第23-37页 |
1.2.1 抗结核药物可诱导肝细胞发生损伤 | 第23-26页 |
1.2.2 CYP1A1 mRNA的变化与不同种类抗结核药致肝细胞损伤有关 | 第26-27页 |
1.2.3 抗结核药导致肝细胞中CYP1A1启动子区CpG岛高甲基化 | 第27-28页 |
1.2.4 抑制剂5-Aza-CdR可抑制CYP1A1启动子区高甲基化进而缓解ADIH | 第28-37页 |
1.3 讨论 | 第37-41页 |
1.3.1 不同种类抗结核药物致肝细胞发生损伤 | 第37-38页 |
1.3.2 抗结核药致肝细胞损伤可导致CYP1A1 mRNA发生低表达 | 第38-39页 |
1.3.3 CYP1A1启动子区CpG岛甲基化与ADIH关系 | 第39页 |
1.3.4 甲基化抑制剂5-Aza-CdR的发挥去甲基化作用 | 第39-40页 |
1.3.5 抑制剂5-Aza-CdR抑制CYP1A1启动子区CpG岛甲基化 | 第40-41页 |
1.3.6 抑制剂5-Aza-CdR促进CYP1A1基因的表达 | 第41页 |
1.3.7 抑制剂5-Aza-CdR缓解ADIH | 第41页 |
1.4 小结 | 第41-42页 |
1.5 存在的问题及展望 | 第42页 |
参考文献 | 第42-47页 |
第2章 综述 DNA甲基化在疾病中的作用 | 第47-60页 |
2.1 DNA甲基化 | 第47-48页 |
2.2 DNA甲基化和DNA甲基转移酶 | 第48-49页 |
2.3 DNA甲基化的检测方法 | 第49-50页 |
2.4 DNA甲基化与疾病 | 第50-53页 |
2.4.1 DNA甲基化与糖尿病 | 第50-51页 |
2.4.2 DNA甲基化与胃癌 | 第51页 |
2.4.3 DNA甲基化与肝癌 | 第51-53页 |
参考文献 | 第53-60页 |
结论 | 第60-61页 |
致谢 | 第61-62页 |
导师简介 | 第62-63页 |
作者简介 | 第63-64页 |
学位论文数据集 | 第64页 |