| 摘要 | 第6-7页 |
| Abstract | 第7页 |
| 英文缩略语表 | 第8-9页 |
| 前言 | 第9-12页 |
| 材料与方法 | 第12-23页 |
| 1. 材料 | 第12-17页 |
| 1.1 研究对象 | 第12页 |
| 1.2 实验所用材料及试剂 | 第12-17页 |
| 2. 方法 | 第17-21页 |
| 2.1 改良 TES 水浴脱蜡-酚氯仿法提取组织 DNA | 第17-18页 |
| 2.2 基因组 DNA 浓度测定 | 第18页 |
| 2.3 甲基化敏感限制性内切酶酶切消化 DNA | 第18页 |
| 2.4 梯度 PCR 扩增 HUMARA 基因 | 第18-19页 |
| 2.5 PCR 产物琼脂糖凝胶电泳鉴定 | 第19-20页 |
| 2.6 SDS-PAGE 凝胶电泳鉴定扩增成功的 PCR 产物 | 第20-21页 |
| 3. 实验室的质量控制 | 第21-22页 |
| 3.1 组织 DNA 的制备及梯度 PCR 检测的质量控制方法 | 第21页 |
| 3.2 SDS-PAGE 凝胶电泳制备及电泳过程中的质量控制方法 | 第21-22页 |
| 4. 数据结果的分析 | 第22-23页 |
| 结果 | 第23-26页 |
| 1. Kaposi 肉瘤组织和对照组（皮肤血管瘤）的一般资料 | 第23页 |
| 2. Kaposi 肉瘤和皮肤良性血管瘤中 HUMARA 基因的检测结果 | 第23-26页 |
| 2.1 基因组 DNA 的检测结果 | 第23-24页 |
| 2.2 HUMARA 基因的杂合率 | 第24页 |
| 2.3 Kaposi 肉瘤与皮肤良性血管瘤组织克隆状态比较 | 第24-25页 |
| 2.4 Kaposi 肉瘤克隆状态与 Kaposi 肉瘤相关因素的关系 | 第25-26页 |
| 讨论 | 第26-33页 |
| 1. Kaposi 肉瘤克隆性研究必要性的探讨 | 第26-27页 |
| 2. X 染色体 HUMARA 基因随机失活用于克隆性分析的原理探讨 | 第27-29页 |
| 3. Kaposi 肉瘤的克隆状态及意义的探讨 | 第29页 |
| 4. 不同民族、分期、HIV 和 HHV-8 感染的 Kaposi 肉瘤克隆性探讨 | 第29-30页 |
| 5. 克隆性检测在 Kaposi 肉瘤患者治疗中意义的探讨 | 第30-31页 |
| 6. Kaposi 肉瘤克隆性进一步研究的探讨 | 第31页 |
| 7. 小结 | 第31-33页 |
| 结论 | 第33-34页 |
| 参考文献 | 第34-38页 |
| 文献综述 | 第38-47页 |
| 参考文献 | 第44-47页 |
| 附表 | 第47-49页 |
| 致谢 | 第49-50页 |
| 作者简介 | 第50-51页 |
| 导师评阅表 | 第51页 |
