| 中文摘要 | 第8-10页 |
| 第一章 前言 | 第10-16页 |
| 1 果实发育及植物激素的作用 | 第10-11页 |
| 2 细胞分裂素对细胞分裂的调节 | 第11-13页 |
| 2．1 细胞周期及周期蛋白 | 第11-12页 |
| 2．2 细胞分裂素对细胞周期的调节 | 第12-13页 |
| 3 瓜类果实发育中的糖代谢 | 第13-16页 |
| 3．1 瓜类果实中的糖代谢酶类 | 第13-14页 |
| 3．2 酸性转化酶的作用 | 第14-16页 |
| 第二章 CPPU对瓠瓜单性结实的诱导作用 | 第16-21页 |
| 1 材料与方法 | 第16-17页 |
| 1．1 植物材料与生长调节剂 | 第16-17页 |
| 1．2 材料处理 | 第17页 |
| 2 结果与分析 | 第17-19页 |
| 2．1 不同处理对瓠瓜座果和果实发育的影响 | 第17页 |
| 2．2 CPPU不同处理对瓠瓜座果数和果实产量的影响 | 第17-19页 |
| 3 讨论 | 第19-21页 |
| 第三章 CPPU处理瓠瓜子房对叶片光合作用和~（14）C同化物分配的影响 | 第21-27页 |
| 1 材料与方法 | 第21-22页 |
| 1．1 供试材料 | 第21页 |
| 1．2 试验方法 | 第21-22页 |
| 1．2．1 CPPU处理对瓠瓜产量、干物质分配和光合作用的影响 | 第21-22页 |
| 1．2．2 CPPU处理对~（14）C同化物分配的影响 | 第22页 |
| 2 结果与分析 | 第22-25页 |
| 2．1 CPPU处理对瓠瓜产量的影响 | 第22-23页 |
| 2．2 CPPU处理对植株源库关系的影响 | 第23-24页 |
| 2．3 CPPU处理对光合作用的影响 | 第24页 |
| 2．4 CPPU处理对同化物分配的影响 | 第24-25页 |
| 3 讨论 | 第25-27页 |
| 第四章 CO_2加富对CPPU提高瓠瓜果实产量的增强效应 | 第27-31页 |
| 1 材料与方法 | 第27-28页 |
| 2 结果与分析 | 第28-29页 |
| 2．1 不同CO_2浓度下CPPU处理对瓠瓜果实产量的影响 | 第28-29页 |
| 2．2 不同CO_2浓度下CPPU处理对瓠瓜叶片光合作用的影响 | 第29页 |
| 3 讨论 | 第29-31页 |
| 第五章 CPPU诱导瓠瓜单性结实中对内源激素水平的影响 | 第31-35页 |
| 1 材料与方法 | 第31页 |
| 1．1 材料处理 | 第31页 |
| 1．2 内源激素含量的测定 | 第31页 |
| 2 结果与分析 | 第31-33页 |
| 3 讨论 | 第33-35页 |
| 第六章 CPPU诱导瓠瓜单性结实中对细胞分裂和膨大的影响 | 第35-40页 |
| 1 材料与方法 | 第35-36页 |
| 1．1 材料处理 | 第35页 |
| 1．2 细胞大小和数目的测定 | 第35-36页 |
| 2 结果与分析 | 第36-37页 |
| 2．1 不同处理对细胞数目变化的影响 | 第36页 |
| 2．2 不同处理对细胞大小的影响 | 第36-37页 |
| 3 讨论 | 第37-40页 |
| 第七章 CPPU诱导瓠瓜单性结实中对CycD3基因表达差异的影响 | 第40-60页 |
| 1 材料与方法 | 第41-49页 |
| 1．1 材料处理 | 第41页 |
| 1．2 总RNA提取 | 第41页 |
| 1．3 cDNA第一链的合成 | 第41-42页 |
| 1．4 DNA的提取 | 第42页 |
| 1．5 利用简并PCR从瓠瓜基因组DNA和果实组织cDNA获得CycD3基因片段 | 第42-43页 |
| 1．6 RACE cDNA cloning | 第43-44页 |
| 1．7 PCR产物的纯化、转化及克隆测序 | 第44-46页 |
| 1．7．1 PCR产物切胶纯化 | 第44页 |
| 1．7．2 PCR产物与pUC-T-Vector连接 | 第44-45页 |
| 1．7．3 感受态细胞制备 | 第45页 |
| 1．7．4 转化 | 第45页 |
| 1．7．5 重组克隆的筛选与鉴定 | 第45-46页 |
| 1．7．6 测序 | 第46页 |
| 1．8 Southen杂交 | 第46-49页 |
| 1．8．1 基因组DNA的酶切及电泳 | 第46-47页 |
| 1．8．2 转膜 | 第47-48页 |
| 1．8．3 同位素探针制备 | 第48页 |
| 1．8．4 杂交 | 第48-49页 |
| 1．9 Northern杂交 | 第49页 |
| 1．9．1 RNA甲醛变性琼脂糖凝胶电泳 | 第49页 |
| 1．9．2 转膜 | 第49页 |
| 1．9．3 同位素探针制备及Northern杂交 | 第49页 |
| 1．10 序列分析 | 第49页 |
| 2 结果与分析 | 第49-57页 |
| 2．1 瓠瓜果实组织CycD3基因全长cDNA序列的测定 | 第49-54页 |
| 2．1．1 CycD3特异片段的扩增 | 第49-50页 |
| 2．1．2 3'-RACE | 第50-51页 |
| 2．1．3 5'-RACE | 第51-52页 |
| 2．1．4 全长序列及其推测的氨基酸序列 | 第52-54页 |
| 2．2 瓠瓜果实组织CycD3氨基酸序列特征及同源分析 | 第54-56页 |
| 2．3 瓠瓜CycD3基因的Southern杂交结果分析 | 第56-57页 |
| 2．4 授粉受精及CPPU处理对瓠瓜果实发育中CycD3基因表达差异的影响 | 第57页 |
| 3 讨论 | 第57-60页 |
| 第八章 CPPU诱导瓠瓜单性结实中对酸性转化酶基因表达差异的影响 | 第60-72页 |
| 1 材料与方法 | 第60-63页 |
| 1．1 材料处理及总RNA提取 | 第60页 |
| 1．2 利用简并PCR从瓠瓜果实cDNA获得酸性转化酶基因片段 | 第60-61页 |
| 1．3 RACE（rapid amplification of cDNA ends）cDNA cloning | 第61-62页 |
| 1．4 Southen杂交 | 第62页 |
| 1．5 酸性转化酶的活性测定 | 第62页 |
| 1．5．1 蛋白质的提取、定量及SDS-PAGE分析 | 第62页 |
| 1．5．2 酸性转化酶的活性测定 | 第62页 |
| 1．6 Northern杂交 | 第62-63页 |
| 2 结果与分析 | 第63-70页 |
| 2．1 瓠瓜果实组织酸性转化酶基因全长cDNA序列的测定 | 第63-67页 |
| 2．1．1 550bp酸性转化酶基因片段的获得 | 第63页 |
| 2．1．2 3'-RACE | 第63-64页 |
| 2．1．3 5'-RACE | 第64页 |
| 2．1．4 全长序列及其推测的氨基酸序列 | 第64-67页 |
| 2．2 瓠瓜果实组织Acid invertase氨基酸序列特征及同源分析 | 第67页 |
| 2．3 蛋白质浓度变化及SDS-PAGE分析 | 第67-68页 |
| 2．4 酸性转化酶活性变化 | 第68-69页 |
| 2．5 CPPU处理对瓠瓜果实发育中酸性转化酶基因表达差异的影响 | 第69-70页 |
| 3 讨论 | 第70-72页 |
| 第九章 讨论 | 第72-75页 |
| 参考文献 | 第75-85页 |
| 英文摘要 | 第85页 |
| 发表文章 | 第87-88页 |
| 致谢 | 第88页 |
