| 中文摘要 | 第4-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 缩略语/符号说明 | 第10-14页 |
| 前言 | 第14-16页 |
| 研究成果、现状 | 第14-15页 |
| 研究目的、方法 | 第15-16页 |
| 一、ADAM12在不同级别胶质瘤组织中的表达 | 第16-35页 |
| 1.1 对象和方法 | 第16-27页 |
| 1.1.1 病例资料和实验对象 | 第16页 |
| 1.1.2 主要实验试剂与仪器 | 第16-18页 |
| 1.1.3 实验方法 | 第18-27页 |
| 1.1.4 统计学方法 | 第27页 |
| 1.2 结果 | 第27-31页 |
| 1.2.1 免疫组化染色检测ADAM12在不同级别胶质瘤组织中的表达 | 第27-29页 |
| 1.2.2 Real time-PCR检测不同级别胶质瘤组织中ADAM12 m RNA的表达情况 | 第29页 |
| 1.2.3 Western blotting检测不同级别胶质瘤组织中ADAM12蛋白的表达 | 第29-30页 |
| 1.2.4 免疫荧光双染检测ADAM12与胶质瘤干细胞相关标志物的共表达 | 第30-31页 |
| 1.3 讨论 | 第31-34页 |
| 1.4 小结 | 第34-35页 |
| 二、ADAM12在维持CD33+胶质瘤细胞自我更新能力中的作用 | 第35-57页 |
| 2.1 对象和方法 | 第36-44页 |
| 2.1.1 实验对象 | 第36-38页 |
| 2.1.2 实验方法 | 第38-43页 |
| 2.1.3 实验分组 | 第43页 |
| 2.1.4 统计学方法 | 第43-44页 |
| 2.2 结果 | 第44-52页 |
| 2.2.1 Real time-PCR与western blotting检测ADAM12的敲低效率 | 第44-45页 |
| 2.2.2 肿瘤球形成实验检测沉默ADAM12基因表达后细胞的成球能力 | 第45-46页 |
| 2.2.3 不同处理组细胞系分化相关蛋白表达情况 | 第46-48页 |
| 2.2.4 Real time-PCR与Western blotting检测不同处理组细胞Notch通路组分在蛋白与m RNA水平的表达情况 | 第48-51页 |
| 2.2.5 酶联免疫吸附实验检测沉默ADAM12基因表达后细胞培养液中脱落DLL1的含量 | 第51-52页 |
| 2.3 讨论 | 第52-56页 |
| 2.4 小结 | 第56-57页 |
| 三、Notch通路对ADAM12表达的调控作用 | 第57-67页 |
| 3.1 对象和方法 | 第57-59页 |
| 3.1.1 实验对象、材料和主要仪器 | 第57-58页 |
| 3.1.2 实验方法 | 第58-59页 |
| 3.1.3 实验分组 | 第59页 |
| 3.1.4 统计学方法 | 第59页 |
| 3.2 结果 | 第59-64页 |
| 3.2.1 DAPT对U87及U251细胞系活性的影响 | 第59-60页 |
| 3.2.2 Real-time PCR检测U87及U251细胞系不同处理组Notch1、Hes1以及ADAM12 m RNA表达情况 | 第60-62页 |
| 3.2.3 Western blotting检测U87及U251细胞系不同处理组Notch1、Hes1以及ADAM12蛋白表达情况 | 第62-64页 |
| 3.3 讨论 | 第64-66页 |
| 3.4 小结 | 第66-67页 |
| 结论 | 第67-68页 |
| 参考文献 | 第68-73页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第73-74页 |
| 综述 | 第74-84页 |
| 综述参考文献 | 第80-84页 |
| 致谢 | 第84-86页 |
| 个人简历 | 第86页 |
