| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-8页 |
| 英文词表 | 第12-13页 |
| 第1章 文献综述 | 第13-21页 |
| 1.1 激活素 | 第13-17页 |
| 1.1.1 激活素的生物学特性 | 第13-14页 |
| 1.1.2 激活素的信号传导 | 第14-15页 |
| 1.1.3 激活素的生物学作用 | 第15-17页 |
| 1.2 小胶质细胞 | 第17-19页 |
| 1.2.1 小胶质细胞的生物学特征 | 第17-18页 |
| 1.2.2 小胶质细胞的生物学作用 | 第18-19页 |
| 1.3 本课题的研究目的、内容和意义 | 第19-21页 |
| 1.3.1 本课题研究目标 | 第19页 |
| 1.3.2 本课题研究内容 | 第19-20页 |
| 1.3.3 本课题的研究特色 | 第20-21页 |
| 第2章 材料与方法 | 第21-29页 |
| 2.1 细胞 | 第21页 |
| 2.2 主要试剂 | 第21页 |
| 2.3 主要试剂的配制 | 第21-22页 |
| 2.3.1 磷酸盐缓冲液（1×PBS）的配制 | 第21页 |
| 2.3.2 胰蛋白酶消化液的配制 | 第21-22页 |
| 2.3.3 吉姆萨染液配制 | 第22页 |
| 2.3.4 Griess试剂的配制 | 第22页 |
| 2.4 主要实验仪器 | 第22-23页 |
| 2.5 实验方法 | 第23-28页 |
| 2.5.1 BV2细胞的培养 | 第23页 |
| 2.5.2 Giemsa染色 | 第23页 |
| 2.5.3 Griess法检测NO含量 | 第23-24页 |
| 2.5.4 RT-PCR | 第24-26页 |
| 2.5.5 ELISA | 第26-27页 |
| 2.5.6 流式细胞术检测BV2细胞表面TLR2和TLR4表达 | 第27页 |
| 2.5.7 pcDNA3-Smad3质粒瞬时转染BV2细胞 | 第27-28页 |
| 2.6 统计学分析 | 第28-29页 |
| 第3章 实验结果 | 第29-48页 |
| 3.1 激活素A抑制LPS活化BV2细胞活性 | 第29-39页 |
| 3.1.1 激活素A及其受体、信号蛋白Smads在BV2细胞的表达 | 第29页 |
| 3.1.2 激活素A对LPS活化BV2细胞形态学变化的影响 | 第29-30页 |
| 3.1.3 激活素A对LPS活化BV2细胞NO分泌及i NOS mRNA表达的影响 | 第30-32页 |
| 3.1.4 激活素A和LPS对BV2细胞炎性细胞因子分泌及其mRNA表达的影响 | 第32-35页 |
| 3.1.5 激活素A与LPS对BV2细胞激活素受体及Smads表达的影响 | 第35-37页 |
| 3.1.6 激活素A对LPS诱导的BV2细胞TLR2和TLR4表达的影响 | 第37-39页 |
| 3.2 Smad3介导激活素A调控BV2细胞活性的作用 | 第39-48页 |
| 3.2.1 瞬时转染Smad3过表达细胞系的建立与鉴定 | 第39-40页 |
| 3.2.2 Smad3过表达对于BV2细胞炎性因子分泌及mRNA表达影响 | 第40-43页 |
| 3.2.3 Smad3过表达对BV2细胞激活素受体及Smads表达的影响 | 第43-45页 |
| 3.2.4 Smad3过表达对BV2细胞表面TLR2和TLR24表达的影响 | 第45-48页 |
| 第4章 讨论 | 第48-52页 |
| 第5章 结论 | 第52-53页 |
| 参考文献 | 第53-58页 |
| 作者简介及攻读硕士期间取得的成果 | 第58-59页 |
| 致谢 | 第59页 |
