| 摘要 | 第5-7页 |
| ABSTRACT | 第7-9页 |
| 缩略词表 | 第12-13页 |
| 第一章 文献综述 卵巢衰老的研究进展 | 第13-28页 |
| 1.1 卵巢衰老机制 | 第14-16页 |
| 1.1.1 卵泡减少与卵巢衰老 | 第14-15页 |
| 1.1.2 卵泡减少与内分泌 | 第15-16页 |
| 1.2 造成卵巢衰老的因素 | 第16-21页 |
| 1.2.1 遗传因素 | 第17-18页 |
| 1.2.2 微环境因素与卵巢衰老 | 第18-21页 |
| 1.2.3 病理因素 | 第21页 |
| 1.2.4 其他因素 | 第21页 |
| 1.3 转录组分析卵巢衰老的研究进展 | 第21-28页 |
| 1.3.1 转录组定义 | 第21-22页 |
| 1.3.2 转录组测序技术发展 | 第22-23页 |
| 1.3.3 转录组的基本方法和特点 | 第23-26页 |
| 1.3.4 转录组测序在生殖衰老方面的研究 | 第26-28页 |
| 第二章 RNA-seq分析藻蓝蛋白对致衰小鼠卵巢的影响 | 第28-65页 |
| 2.1 引言 | 第28-29页 |
| 2.2 实验材料 | 第29-30页 |
| 2.2.1 实验动物 | 第29-30页 |
| 2.2.2 主要仪器设备 | 第30页 |
| 2.2.3 主要药品 | 第30页 |
| 2.2.4 其他试剂 | 第30页 |
| 2.2.5 主要试剂盒 | 第30页 |
| 2.3 实验方法 | 第30-40页 |
| 2.3.1 实验设计 | 第30-32页 |
| 2.3.2 发情期的鉴定 | 第32页 |
| 2.3.3 卵巢的收集 | 第32页 |
| 2.3.4 总RNA的提取 | 第32页 |
| 2.3.5 总RNA检测 | 第32-33页 |
| 2.3.6 测序流程 | 第33-35页 |
| 2.3.7 数据处理及生物信息学分析 | 第35-37页 |
| 2.3.8 反转录合成cDNA | 第37-38页 |
| 2.3.9 SYBR Green实时荧光定量PCR | 第38-39页 |
| 2.3.10 RT-qPCR验证基因的引物信息 | 第39-40页 |
| 2.3.11 数据处理 | 第40页 |
| 2.4 实验结果及分析 | 第40-60页 |
| 2.4.1 用于测序的发情期老鼠阴道涂片 | 第40-41页 |
| 2.4.2 卵巢重量与卵巢系数 | 第41-42页 |
| 2.4.3 总RNA提取和质检结果 | 第42-43页 |
| 2.4.4 测序数据产出与质量评估 | 第43页 |
| 2.4.5 样品间基因水平的RNA-seq相关性 | 第43-44页 |
| 2.4.6 基因表达水平分析 | 第44-46页 |
| 2.4.7 组间差异基因功能富集分析 | 第46-58页 |
| 2.4.8 差异基因的RT-qPCR验证 | 第58-60页 |
| 2.5 讨论 | 第60-65页 |
| 2.5.1 测序结果分析 | 第60-62页 |
| 2.5.2 测序结果可靠性验证 | 第62页 |
| 2.5.3 候选差异基因的表达规律 | 第62-65页 |
| 结论 | 第65-66页 |
| 参考文献 | 第66-78页 |
| 致谢 | 第78-80页 |
| 攻读学位期间发表论文 | 第80页 |