| 摘要 | 第5-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 1 前言 | 第10-19页 |
| 1.1 植物耐盐机制的研究进展 | 第10-12页 |
| 1.1.1 盐胁迫对植物生理变化的影响 | 第10-11页 |
| 1.1.2 盐胁迫中细胞信号和次级信号分子 | 第11-12页 |
| 1.2 盐胁迫中脱落酸在植物中的信号作用 | 第12-14页 |
| 1.2.1 盐胁迫对植物的伤害 | 第12页 |
| 1.2.2 盐胁迫下不同植物中脱落酸的信号作用 | 第12-13页 |
| 1.2.3 脱落酸在盐土植物中的作用 | 第13页 |
| 1.2.4 脱落酸在淡土植物中的作用 | 第13-14页 |
| 1.3 植物中MAPK信号途径响应盐胁迫的作用 | 第14-15页 |
| 1.4 AHLS在植物抗逆机制中的研究进展 | 第15-18页 |
| 1.4.1 产AHLs细菌引起植物响应 | 第16-17页 |
| 1.4.2 转产AHLs基因植物的抗性研究 | 第17页 |
| 1.4.3 AHLs引起植物抗性的研究 | 第17-18页 |
| 1.4.4 AHLs促进植物防卫机制的研究 | 第18页 |
| 1.5 本研究的内容和意义 | 第18-19页 |
| 2 材料与方法 | 第19-33页 |
| 2.1 实验材料 | 第19-23页 |
| 2.1.1 材料 | 第19页 |
| 2.1.2 主要化学试剂 | 第19页 |
| 2.1.3 实验所用培养基及缓冲液 | 第19-21页 |
| 2.1.4 主要仪器设备 | 第21-23页 |
| 2.1.5 实验所用引物 | 第23页 |
| 2.2 试验方法 | 第23-33页 |
| 2.2.1 种子消毒 | 第23-24页 |
| 2.2.2 萌发率测定 | 第24页 |
| 2.2.3 根长试验 | 第24页 |
| 2.2.4 叶绿素的测定 | 第24页 |
| 2.2.5 离子含量的测定 | 第24页 |
| 2.2.6 AHLs对气孔调节的分析 | 第24-25页 |
| 2.2.7 植物RNA的提取及反转录 | 第25-26页 |
| 2.2.8 PCR反应体系 | 第26页 |
| 2.2.9 qRT-PCR反应体系 | 第26-27页 |
| 2.2.10 胶回收步骤 | 第27页 |
| 2.2.11 质粒提取步骤 | 第27-28页 |
| 2.2.12 大肠杆菌感受态制备 | 第28页 |
| 2.2.13 连接 18-T载体步骤 | 第28-29页 |
| 2.2.14 双酶切体系的配置 | 第29页 |
| 2.2.15 植物蛋白提取过程 | 第29页 |
| 2.2.16 ELISA操作步骤 | 第29页 |
| 2.2.17 western blot操作步骤 | 第29-30页 |
| 2.2.18 蛋白诱导及检测操作步骤 | 第30页 |
| 2.2.19 蛋白纯化及浓缩操作步骤 | 第30-31页 |
| 2.2.20 微量热泳动检测GCR2 与AHLs的结合特征 | 第31页 |
| 2.2.21 利用CV026 检测3H-3OC6-HSL生物活性的操作步骤 | 第31-32页 |
| 2.2.22 ~3H-3OC6-HSL点膜实验操作步骤 | 第32页 |
| 2.2.23 放射性配基法实验步骤 | 第32页 |
| 2.2.24 3H-3OC6-HSL与GCR2 的非特异结合性分析 | 第32-33页 |
| 3 结果与分析 | 第33-54页 |
| 3.1 3OC6-HSL与GCR2 的结合性分析 | 第33-40页 |
| 3.1.1 3OC6-HSL调控GCR2 的qRT-PCR和ELISA分析 | 第33页 |
| 3.1.2 融合蛋白His-GCR2 的诱导表达及可溶性分析 | 第33-34页 |
| 3.1.3 融合蛋白His-GCR2 的纯化和浓缩 | 第34页 |
| 3.1.4 GCR2 与不同AHLs结合特征的微量热泳动分析 | 第34-36页 |
| 3.1.5 利用CV026 验证3H-3OC6-HSL生物学活性 | 第36页 |
| 3.1.6 放射自显影法分析3H-3OC6-HSL与GCR2 的结合情况 | 第36-37页 |
| 3.1.7 放射性配基法分析3H-3OC6-HSL与GCR2 的结合情况 | 第37-38页 |
| 3.1.8 GCR2 截短质粒的构建 | 第38-40页 |
| 3.2 AHLS提高拟南芥抗盐能力的条件探究 | 第40-46页 |
| 3.2.1 不同AHLs提高拟南芥抗盐能力的筛选 | 第40-42页 |
| 3.2.2 3OC6-HSL在不同浓度NaCl胁迫下对拟南芥萌发率的影响 | 第42-43页 |
| 3.2.3 3OC6-HSL在不同浓度NaCl胁迫下对拟南芥主根生长的影响 | 第43-45页 |
| 3.2.4 不同浓度 3OC6-HSL在 120 mM NaCl胁迫下对拟南芥主根生长的影响 | 第45-46页 |
| 3.3 3OC6-HSL提高拟南芥抗盐能力的生理生化研究 | 第46-50页 |
| 3.3.1 3OC6-HSL对盐胁迫下拟南芥中叶绿素含量的影响 | 第46-48页 |
| 3.3.2 3OC6-HSL对盐胁迫下拟南芥中离子含量的影响 | 第48-49页 |
| 3.3.3 3OC6-HSL对拟南芥气孔关闭的研究 | 第49-50页 |
| 3.4 3OC6-HSL提高拟南芥抗盐能力的分子机制研究 | 第50-54页 |
| 3.4.1 3OC6-HSL调控抗盐相关基因的RT-PCR分析 | 第50-51页 |
| 3.4.2 3OC6-HSL调控依赖及不依赖ABA信号通路的抗盐基因表达分析 | 第51-54页 |
| 4 讨论 | 第54-58页 |
| 4.1 3OC6-HSL与GCR2 的结合性分析 | 第54-55页 |
| 4.2 筛选具有提高拟南芥抗盐能力的AHLS | 第55-56页 |
| 4.3 3OC6-HSL对盐胁迫中拟南芥生理生化的影响 | 第56页 |
| 4.4 3OC6-HSL提高拟南芥抗盐能力的分子机制研究 | 第56-58页 |
| 5 结论 | 第58-59页 |
| 参考文献 | 第59-65页 |
| 在读期间发表学术论文 | 第65-66页 |
| 简历 | 第66-67页 |
| 致谢 | 第67-68页 |
