| 致谢 | 第5-7页 |
| 摘要 | 第7-10页 |
| Abstract | 第10-12页 |
| 全文缩写表 | 第13-19页 |
| 引言 | 第19-24页 |
| 第一章 靶向肽-骨髓间充质干细胞的构建 | 第24-37页 |
| 1.1 仪器与试剂 | 第25-26页 |
| 1.1.1 仪器 | 第25页 |
| 1.1.2 试剂 | 第25-26页 |
| 1.1.3 实验动物 | 第26页 |
| 1.2 实验方法 | 第26-29页 |
| 1.2.1 原代MSCs的制备和培养 | 第26-27页 |
| 1.2.2 棕榈酸(Palmitic acid,PA)-多肽-MSCs的修饰 | 第27页 |
| 1.2.3 MTT(3-(4,5-dimethylthiazol-2-yl)-2,5-diphenyltetrazolium bromide)检测 | 第27-28页 |
| 1.2.4 大鼠大脑中动脉闭塞(middle cerebral artery occlusion,MCAO)模型的建立 | 第28页 |
| 1.2.5 脑提取液的制备 | 第28-29页 |
| 1.2.6 MSCs神经分化 | 第29页 |
| 1.2.7 数据分析 | 第29页 |
| 1.3 实验结果与讨论 | 第29-35页 |
| 1.3.1 PA-peptide修饰条件的筛选 | 第29-32页 |
| 1.3.2 PA-peptide修饰MSCs的表征 | 第32-33页 |
| 1.3.3 PA-peptide修饰对MSCs生物活性的影响 | 第33-35页 |
| 1.4 本章小结 | 第35-37页 |
| 第二章 靶向肽修饰骨髓间充质干细胞的靶向性考察 | 第37-53页 |
| 2.1 仪器与试剂 | 第37-39页 |
| 2.1.1 仪器 | 第37-38页 |
| 2.1.2 试剂 | 第38页 |
| 2.1.3 实验动物 | 第38-39页 |
| 2.2 实验方法 | 第39-41页 |
| 2.2.1 原代培养星形胶质细胞(Astrocyte) | 第39页 |
| 2.2.2 Pep-MSCs体外迁移能力的考察 | 第39-40页 |
| 2.2.3 MCAO模型的建立及鉴定 | 第40页 |
| 2.2.4 Pep-MSCs的体内靶向性考察 | 第40-41页 |
| 2.2.5 数据分析 | 第41页 |
| 2.3 实验结果与讨论 | 第41-52页 |
| 2.3.1 Pep-MSCs的体外趋向性考察 | 第41-46页 |
| 2.3.2 Pep-MSCs的体内靶向性考察 | 第46-52页 |
| 2.4 本章小结 | 第52-53页 |
| 第三章 携载治疗基因的复合功能脑靶向载体对缺血性脑卒中治疗效果的评价 | 第53-69页 |
| 3.1 仪器与试剂 | 第53-55页 |
| 3.1.1 仪器 | 第53-54页 |
| 3.1.2 试剂 | 第54页 |
| 3.1.3 实验动物 | 第54-55页 |
| 3.2 实验方法 | 第55-58页 |
| 3.2.1 SP/RNA复合物的制备 | 第55页 |
| 3.2.2 转染效率的评价和细胞毒性测试 | 第55页 |
| 3.2.3 携载miR-133b的MSCs对于受损星形胶质细胞的保护作用 | 第55-56页 |
| 3.2.4 干细胞移植和行为学测试 | 第56-57页 |
| 3.2.5 组织学分析 | 第57页 |
| 3.2.6 MSCs体内神经分化能力评价 | 第57页 |
| 3.2.7 数据分析 | 第57-58页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第58-67页 |
| 3.3.1 miR-133b的转染 | 第58-62页 |
| 3.3.2 转染miR-133b的MSCs对受损星形胶质细胞的保护作用 | 第62-63页 |
| 3.3.3 缺血性脑卒中的体内药效学评价 | 第63-67页 |
| 3.4 本章小结 | 第67-69页 |
| 全文总结 | 第69-72页 |
| 参考文献 | 第72-81页 |
| 综述 | 第81-137页 |
| References | 第116-137页 |
| 作者简历 | 第137-139页 |
