| 摘要 | 第6-8页 |
| Abstract | 第8-9页 |
| 英文缩略词表 | 第10-14页 |
| 第1章 绪论 | 第14-20页 |
| 1.1 背景及目的 | 第14页 |
| 1.2 化学性肝损伤的研究综述 | 第14-20页 |
| 1.2.1 化学性肝损伤的作用机制 | 第15-17页 |
| 1.2.2 化学性肝损伤模型的建立 | 第17-18页 |
| 1.2.3 肝细胞凋亡 | 第18页 |
| 1.2.4 化学性肝损伤的治疗 | 第18-20页 |
| 第2章 实验研究 | 第20-27页 |
| 2.1 实验动物、试剂与仪器 | 第20页 |
| 2.1.1 实验动物 | 第20页 |
| 2.1.2 主要试剂与仪器 | 第20页 |
| 2.2 高活性DECB的制备 | 第20-21页 |
| 2.2.1 高活性DECB的制备工艺 | 第20-21页 |
| 2.3 DECB对乙醇所致肝损伤小鼠的保护作用 | 第21-23页 |
| 2.3.1 动物分组及给药 | 第21页 |
| 2.3.2 急性酒精性肝损伤模型制备 | 第21页 |
| 2.3.3 小鼠血清生化指标检测 | 第21页 |
| 2.3.4 小鼠肝组织HE染色 | 第21-23页 |
| 2.3.5 统计学方法 | 第23页 |
| 2.4 DECB对CCl4所致肝损伤小鼠的保护作用 | 第23-27页 |
| 2.4.1 动物分组及给药 | 第23-24页 |
| 2.4.2 小鼠CCl4肝损伤模型制备 | 第24页 |
| 2.4.3 生化指标测定及方法 | 第24页 |
| 2.4.4 肝组织HE染色 | 第24页 |
| 2.4.5 TUNEL法检测肝组织细胞凋亡 | 第24页 |
| 2.4.6 RNA提取和质量控制 | 第24页 |
| 2.4.7 芯片实验 | 第24-26页 |
| 2.4.7.1 样品标记和杂交 | 第24页 |
| 2.4.7.2 数据采集和标准化 | 第24页 |
| 2.4.7.3 差异表达基因分析和功能分析 | 第24页 |
| 2.4.7.4 聚类分析 | 第24-25页 |
| 2.4.7.5 差异基因的功能显著性分析 | 第25页 |
| 2.4.7.6 用DAVID对mRNA表达谱芯片筛选到的差异基因进行功能分析和生物通路富集分析 | 第25页 |
| 2.4.7.7 实时定量RT-PCR验证 | 第25-26页 |
| 2.4.8 数据处理 | 第26-27页 |
| 第3章 实验结果 | 第27-35页 |
| 3.1 DECB对乙醇所致肝损伤小鼠的保护作用 | 第27-29页 |
| 3.1.1 各组小鼠酒精耐受时间和醉酒昏睡时间的结果 | 第27页 |
| 3.1.2 各组小鼠ALT和AST活性 | 第27-28页 |
| 3.1.3 各组小鼠肝组织生化指标 | 第28-29页 |
| 3.1.4 各组小鼠肝脏组织学病变观察结果 | 第29页 |
| 3.2 DECB对CCl4所致肝损伤小鼠的保护作用 | 第29-35页 |
| 3.2.1 各组小鼠肝功能指标 | 第29-30页 |
| 3.2.2 各组小鼠肝组织中T-SOD、GSH和MDA水平 | 第30页 |
| 3.2.3 各组小鼠肝组织病理表现 | 第30-31页 |
| 3.2.4 肝组织细胞凋亡 | 第31-32页 |
| 3.2.5 mRNA表达谱芯片筛选差异基因 | 第32-33页 |
| 3.2.6 mRNA表达谱芯片数据聚类结果 | 第33-34页 |
| 3.2.7 实时定量PCR验证 | 第34-35页 |
| 第4章 讨论 | 第35-38页 |
| 4.1 DECB对乙醇所致肝损伤小鼠的保护作用 | 第35页 |
| 4.2 DECB对CCl_4所致肝损伤小鼠的保护作用 | 第35-38页 |
| 第5章 结论 | 第38-39页 |
| 参考文献 | 第39-43页 |
| 作者简介及科研成果 | 第43-44页 |
| 致谢 | 第44页 |
