| 主要英文缩略语索引 | 第4-5页 |
| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 第1章 绪论 | 第12-16页 |
| 第2章 材料和方法 | 第16-28页 |
| 2.1 实验仪器与材料 | 第16-18页 |
| 2.1.1 主要实验仪器 | 第16页 |
| 2.1.2 HUVECs细胞株 | 第16页 |
| 2.1.3 主要实验试剂 | 第16-18页 |
| 2.1.3.1 试剂盒 | 第16-17页 |
| 2.1.3.2 重要试剂 | 第17页 |
| 2.1.3.3 主要抗体 | 第17页 |
| 2.1.3.4 培养基及溶液 | 第17页 |
| 2.1.3.5 其它 | 第17-18页 |
| 2.2 实验方法 | 第18-28页 |
| 2.2.1 细胞培养 | 第18页 |
| 2.2.1.1 复苏 | 第18页 |
| 2.2.1.2 换液及传代 | 第18页 |
| 2.2.1.3 细胞计数 | 第18页 |
| 2.2.2 实验分组及药物干预 | 第18-19页 |
| 2.2.3 Real time-PCR检测HO-1 mRNA的表达 | 第19-21页 |
| 2.2.3.1 实验准备 | 第19页 |
| 2.2.3.2 总RNA的提取 | 第19-20页 |
| 2.2.3.3 RNA完整性鉴定 | 第20页 |
| 2.2.3.4 RNA的定量 | 第20页 |
| 2.2.3.5 合成cDNA | 第20页 |
| 2.2.3.6 引物设计 | 第20-21页 |
| 2.2.3.7 qPCR | 第21页 |
| 2.2.4 HO-1 酶活性测定 | 第21-22页 |
| 2.2.5 Western blot检测HO-1 表达量及Nrf2核转位 | 第22-25页 |
| 2.2.5.1 提取总蛋白 | 第22页 |
| 2.2.5.2 核蛋白和胞浆蛋白提取 | 第22页 |
| 2.2.5.3 测定蛋白质浓度 | 第22-23页 |
| 2.2.5.4 SDS-PAGE | 第23页 |
| 2.2.5.5 转膜 | 第23-24页 |
| 2.2.5.6 封闭 | 第24页 |
| 2.2.5.7 孵育 | 第24页 |
| 2.2.5.8 显影 | 第24-25页 |
| 2.2.6 siRNA转染实验 | 第25页 |
| 2.2.6.1 干扰片段 | 第25页 |
| 2.2.6.2 siRNA转染 | 第25页 |
| 2.2.7 细胞凋亡的检测 | 第25-26页 |
| 2.2.8 统计分析 | 第26-28页 |
| 第3章 实验结果 | 第28-32页 |
| 3.1 TSG诱导HUVECs细胞HO-1 mRNA表达上调 | 第28页 |
| 3.2 TSG诱导HUVECs细胞表达HO-1 蛋白 | 第28-29页 |
| 3.3 TSG诱导的HO-1 产生依赖持续的转录和翻译 | 第29-30页 |
| 3.4 TSG诱导HO-1 表达与Nrf2核转位有关 | 第30-31页 |
| 3.5 抑制HO-1 表达减弱TSG对HUVECs细胞凋亡的抑制作用 | 第31-32页 |
| 第4章 讨论 | 第32-34页 |
| 第5章 结论 | 第34-36页 |
| 参考文献 | 第36-40页 |
| 综述 | 第40-52页 |
| 参考文献 | 第48-52页 |
| 硕士期间取得的科研成果 | 第52-53页 |
| 本研究受以下基金资助 | 第53-54页 |
| 致谢 | 第54页 |
