| 摘要 | 第8-11页 |
| ABSTRACT | 第11-13页 |
| 第一章 文献综述、研究目的及意义 | 第14-44页 |
| 1. 噻枯唑防治水稻白叶枯病的研究现状 | 第14-18页 |
| 1.1 噻枯唑的基本性质 | 第14页 |
| 1.2 噻枯唑作用机制研究进展 | 第14-15页 |
| 1.3 噻枯唑抗性机制研究进展 | 第15-16页 |
| 1.4 其他噻唑类杀菌剂 | 第16-18页 |
| 1.4.1 拌种灵 | 第16-17页 |
| 1.4.2 敌枯唑 | 第17页 |
| 1.4.3 苯丙噻二唑 | 第17-18页 |
| 2. 黄单胞菌属病原菌致病机制研究进展 | 第18-21页 |
| 2.1 黄单胞菌属致病细菌引起的植物病害特征 | 第18-19页 |
| 2.1.1 水稻白叶枯病 | 第18-19页 |
| 2.1.2 柑橘溃疡病 | 第19页 |
| 2.2 黄单胞菌属病原菌致病因子的研究进展 | 第19-21页 |
| 2.2.1 胞外多糖保护细菌抵抗外界环境胁迫 | 第19-20页 |
| 2.2.2 脂多糖在寄主与病原菌互作过程中发挥作用 | 第20页 |
| 2.2.3 Ⅲ型分泌系统是细菌必需的致病因子 | 第20-21页 |
| 3. 植物的系统获得性抗性 | 第21-24页 |
| 3.1 植物系统获得性抗性的研究进展 | 第21-22页 |
| 3.2 水杨酸在植物系统获得性抗性中的功能 | 第22-23页 |
| 3.3 NPR1介导的水杨酸信号调控 | 第23页 |
| 3.4 噻唑类化合物诱导的植物系统获得性抗性 | 第23-24页 |
| 4. 细菌抗药性与生物膜 | 第24-29页 |
| 4.1 生物膜的形成与结构 | 第24页 |
| 4.2 生物膜与致病性的关系 | 第24-26页 |
| 4.3 生物膜产生抗药性的机制 | 第26-28页 |
| 4.4 黄单胞菌属病原细菌生物膜的形成与消解 | 第28-29页 |
| 5. 本论文研究目的和意义 | 第29-31页 |
| 参考文献 | 第31-44页 |
| 第二章 噻枯唑敏感菌株与抗性菌株表型与转录组差异研究 | 第44-76页 |
| 1. 材料与方法 | 第45-51页 |
| 1.1 供试菌株 | 第45页 |
| 1.2 培养条件 | 第45-46页 |
| 1.3 RNA提取 | 第46-47页 |
| 1.4 转录组文库构建与生物信息分析 | 第47页 |
| 1.5 Real-time PCR验证转录组结果 | 第47-49页 |
| 1.5.1 提取RNA | 第47-48页 |
| 1.5.2 反转录反应 | 第48页 |
| 1.5.3 定量PCR反应 | 第48-49页 |
| 1.6 生物学表型分析 | 第49-50页 |
| 1.6.1 致病力与药剂敏感性测定 | 第49-50页 |
| 1.6.2 生长曲线测定 | 第50页 |
| 1.6.3 胞外多糖含量测定 | 第50页 |
| 1.6.4 生物膜测定 | 第50页 |
| 1.6.5 游动性测定 | 第50页 |
| 1.7 敏感性菌株与抗药性菌株对碳源的利用率的差异分析 | 第50-51页 |
| 2. 结果与分析 | 第51-68页 |
| 2.1 敏感性菌株ZJ173与抗药性菌株2-1-1生物学表型分析 | 第51-57页 |
| 2.1.1 生长曲线,致病力与药敏性 | 第51-53页 |
| 2.1.2 胞外多糖产量,生物膜与游动性 | 第53-54页 |
| 2.1.3 敏感性菌株ZJ173与抗药性菌株2-1-1碳源利用率分析 | 第54-57页 |
| 2.2 敏感性菌株ZJ173与抗药性菌株2-1-1转录组分析 | 第57-68页 |
| 2.2.1 测序结果概况 | 第57-59页 |
| 2.2.2 GO功能显著性富集分析 | 第59-60页 |
| 2.2.3 差异表达基因功能分析 | 第60-68页 |
| 2.2.4 测序结果的RT-PCR验证 | 第68页 |
| 3. 讨论 | 第68-71页 |
| 参考文献 | 第71-76页 |
| 第三章 硫氨素合成途径相关基因thiG对Xoo的致病性与药敏性的影响 | 第76-100页 |
| 1. 材料与方法 | 第77-81页 |
| 1.1 菌株,供试植物及其培养方法 | 第77-78页 |
| 1.2 生物学表型测定 | 第78页 |
| 1.3 Real-time PCR法测定基因相对表达量 | 第78-80页 |
| 1.4 数据处理方法 | 第80-81页 |
| 2. 结果与分析 | 第81-90页 |
| 2.1 thiG基因对Xoo的药敏性和致病力的影响 | 第81-82页 |
| 2.2 thiG基因对Xoo的生长能力的影响 | 第82-85页 |
| 2.3 thiG基因对Xoo的细胞聚集能力的影响 | 第85-87页 |
| 2.4 thiG基因对Xoo胞外多糖合成基因簇表达的影响 | 第87-89页 |
| 2.5 thiG基因对Xoo双组份调控系统RpfC/RpfG和硫氨素合成途径相关基因表达的影响 | 第89-90页 |
| 3. 讨论 | 第90-93页 |
| 参考文献 | 第93-100页 |
| 第四章 Xoo的胞外多糖合成相关gum基因家族对噻枯唑药敏性影响 | 第100-114页 |
| 1. 材料与方法 | 第101-103页 |
| 1.1 供试菌株,植物及其培养方法 | 第101-102页 |
| 1.2 在活体条件下测定噻枯唑对Xoo的抑菌效果 | 第102-103页 |
| 2. 结果与分析 | 第103-106页 |
| 2.1 在活体条件下噻枯唑敏感性菌株ZJ173的gum基因对噻枯唑药敏性的影响 | 第103-104页 |
| 2.2 在活体条件下噻枯唑抗性菌株2-1-1的gum基因的对噻枯唑药敏性的影响 | 第104-105页 |
| 2.3 噻枯唑敏感性菌株ZJ173与抗性菌株2-1-1的gum基因缺失突变体的致病力差异 | 第105-106页 |
| 3. 讨论 | 第106-108页 |
| 参考文献 | 第108-114页 |
| 第五章 噻枯唑抑制柑橘溃疡病菌的生长以及诱导柑橘防卫基因的表达 | 第114-140页 |
| 1. 材料与方法 | 第115-119页 |
| 1.1 菌株和植物材料 | 第115-116页 |
| 1.2 在离体和活体条件下噻枯唑对柑橘溃疡病菌的药效实验 | 第116-117页 |
| 1.3 防卫反应相关基因表达量的测定 | 第117-119页 |
| 2. 结果与分析 | 第119-129页 |
| 2.1 噻枯唑在离体和活体条件下均可以抑制柑橘溃疡病菌 | 第119-121页 |
| 2.2 噻枯唑诱导抗病相关基因和NPR基因的表达 | 第121-125页 |
| 2.3 噻枯唑诱导水杨酸信号途径和启动效应相关基因的表达 | 第125-127页 |
| 2.4 噻枯唑对茉莉酸与生长素信号传导途径没有影响 | 第127-129页 |
| 3. 讨论 | 第129-133页 |
| 参考文献 | 第133-140页 |
| 全文小结 | 第140-142页 |
| 攻读博士学位期间发表的学术论文 | 第142-144页 |
| 致谢 | 第144页 |
