摘要 | 第7-9页 |
ABSTRACT | 第9-10页 |
第1章 文献综述 | 第11-21页 |
1.1 植物应对非生物胁迫的研究进展 | 第11-13页 |
1.1.1 植物对渗透胁迫的应答 | 第11-12页 |
1.1.2 植物对离子毒害的应答 | 第12-13页 |
1.1.3 植物对氧化胁迫的应答 | 第13页 |
1.2 甲硫氨酸亚砜还原酶(MSR) | 第13-19页 |
1.2.1 甲硫氨酸 | 第13-14页 |
1.2.2 生物体内MSR的研究进展 | 第14-19页 |
1.3 对MSR的研究展望 | 第19-20页 |
1.4 本论文的目的、意义和主要研究内容 | 第20-21页 |
第2章 研究工作 | 第21-31页 |
2.1 实验材料 | 第21-25页 |
2.1.1 植物材料及生长条件 | 第21页 |
2.1.2 胁迫处理条件及生长时期的选择 | 第21-22页 |
2.1.3 菌株和载体质粒 | 第22-23页 |
2.1.4 主要溶液、培养基及其配制 | 第23-25页 |
2.2 实验方法 | 第25-31页 |
2.2.1 基因cDNA的克隆与序列分析 | 第25-26页 |
2.2.2 酵母表达系统的构建及抗逆检测 | 第26页 |
2.2.3 重组蛋白的酶活测定及酶学性质分析 | 第26-28页 |
2.2.4 基因亚细胞定位实验 | 第28页 |
2.2.5 原核表达 | 第28页 |
2.2.6 转基因拟南芥实验 | 第28-29页 |
2.2.7 胁迫相关生理指标的测定 | 第29-30页 |
2.2.8 相关Marker基因表达模式研究 | 第30页 |
2.2.9 胁迫处理条件下MSRB1.1酶活分析 | 第30-31页 |
第3章 短柄草BdMSR基因家族的鉴定与功能分析 | 第31-43页 |
3.1 BdMSR基因的鉴定 | 第31-33页 |
3.2 基因结构分析及序列比对 | 第33-34页 |
3.3 基因序列同源分析 | 第34-35页 |
3.4 启动子分析 | 第35-36页 |
3.5 BdMSR基因家族成员的表达 | 第36-39页 |
3.5.1 BdMSR基因家族成员的组织表达 | 第36页 |
3.5.2 种子不同发育时期BdMSR基因家族的表达谱 | 第36-37页 |
3.5.3 胁迫处理条件下BdMSR基因的表达谱 | 第37-39页 |
3.6 BdMSR基因提高转基因酵母的抗逆性 | 第39-40页 |
3.7 BdMSR酶活测定 | 第40页 |
3.8 讨论 | 第40-43页 |
第4章 BdMSRB1.1的功能及作用机制 | 第43-59页 |
4.1 BdMSRB1.1基因的可以响应非生物胁迫 | 第43页 |
4.2 BdMSRB1.1基因的序列分析 | 第43-44页 |
4.3 BdMSRB1.1定位于叶绿体 | 第44-46页 |
4.4 原核表达及酶学性质分析 | 第46-48页 |
4.4.1 原核表达 | 第46-47页 |
4.4.2 BdMSRB1.1酶学性质分析 | 第47-48页 |
4.5 拟南芥BdMSRB1.1基因过表达株系及突变系的获得 | 第48-49页 |
4.5.1 拟南芥BdMSRB1.1基因过表达株系的获得 | 第48-49页 |
4.5.2 拟南芥AtMSRB1基因突变系的鉴定 | 第49页 |
4.5.3 转基因拟南芥MSRB1.1酶活测定 | 第49页 |
4.6 拟南芥的表型实验 | 第49-52页 |
4.6.1 过表达BdMSRB1.1基因提高转基因拟南芥盐、旱抗性 | 第49-51页 |
4.6.2 过表达BdMSRB1.1基因提高转基因拟南芥氧化胁迫抗性 | 第51-52页 |
4.6.3 拟南芥过表达BdMSRB1.1基因株系对ABA不敏感 | 第52页 |
4.7 BdMSRB1.1作用的生理机制 | 第52-56页 |
4.7.1 拟南芥过表达BdMSRB1.1株系ROS含量减少 | 第52页 |
4.7.2 拟南芥过表达BdMSRB1.1基因ROS清除酶基因的表达增强,酶活提高 | 第52-54页 |
4.7.3 拟南芥过表达BdMSRB1.1基因MDA含量减少,可溶性糖含量增加 | 第54-56页 |
4.8 讨论 | 第56-59页 |
附录 | 第59-61页 |
参考文献 | 第61-71页 |
致谢 | 第71-73页 |
研究生期间发表的学术论文 | 第73-74页 |
学位论文评阅及答辩情况表 | 第74页 |