| 致谢 | 第4-5页 |
| 中文摘要 | 第5-9页 |
| Abstract | 第9-12页 |
| 缩略词表 | 第13-17页 |
| 1 前言 | 第17-20页 |
| 2 实验材料与仪器 | 第20-24页 |
| 2.1 细胞株 | 第20页 |
| 2.2 实验动物 | 第20页 |
| 2.3 仪器 | 第20-21页 |
| 2.4 药物与主要试剂 | 第21-24页 |
| 2.4.1 药物与细胞因子 | 第21页 |
| 2.4.2 主要试剂 | 第21-22页 |
| 2.4.3 试剂配制方法 | 第22-24页 |
| 3 实验方法 | 第24-35页 |
| 3.1 细胞培养 | 第24页 |
| 3.2 小鼠骨髓来源巨噬细胞的分离及分化 | 第24页 |
| 3.3 流式细胞术检测细胞表面蛋白 | 第24-25页 |
| 3.4 流式细胞术检测细胞凋亡情况 | 第25页 |
| 3.5 苏木素&伊红染色法(H&E染色法) | 第25-26页 |
| 3.6 免疫荧光 | 第26-27页 |
| 3.6.1 细胞免疫荧光 | 第26页 |
| 3.6.2 组织免疫荧光 | 第26-27页 |
| 3.7 免疫组化 | 第27-28页 |
| 3.8 条件培养基的制备 | 第28页 |
| 3.9 Transwell小室迁移实验 | 第28-29页 |
| 3.10 SRB法测细胞增殖情况 | 第29页 |
| 3.11 Real-time PCR | 第29-31页 |
| 3.11.1 总mRNA提取 | 第29-30页 |
| 3.11.2 逆转录合成cDNA | 第30页 |
| 3.11.3 荧光定量PCR | 第30-31页 |
| 3.12 LLC细胞体内转移模型 | 第31-32页 |
| 3.12.1 LLC腋下接种模型 | 第31-32页 |
| 3.12.2 LLC尾静脉接种模型 | 第32页 |
| 3.13 小鼠肺组织单细胞分离 | 第32-33页 |
| 3.14 Western blot测定蛋白表达情况 | 第33-34页 |
| 3.14.1 细胞培养和样本制备 | 第33页 |
| 3.14.2 总蛋白提取 | 第33页 |
| 3.14.3 Bradford法测蛋白浓度 | 第33-34页 |
| 3.14.4 蛋白质免疫印迹 | 第34页 |
| 3.15 数据分析 | 第34-35页 |
| 4 实验结果 | 第35-61页 |
| 4.1 Imatinib抑制巨噬细胞M2型极化 | 第35-41页 |
| 4.1.1 Imatinib抑制RAW264.7的M2型极化 | 第35-37页 |
| 4.1.2 Imatinib抑制BMDM的M2型极化 | 第37-41页 |
| 4.2 Imatinib对巨噬细胞的M1型极化无明显影响 | 第41-42页 |
| 4.3 Imatinib抑制M2型巨噬细胞诱导的LLC细胞迁移运动能力 | 第42-45页 |
| 4.4 Imatinib本身对LLC细胞迁移运动能力无影响 | 第45-47页 |
| 4.5 Imatinib可显著抑制肿瘤细胞的转移 | 第47-52页 |
| 4.5.1 Imatinib抑制LLC腋下接种模型中肿瘤细胞的肺转移 | 第47-50页 |
| 4.5.2 Imatinib抑制LLC尾静脉接种模型中肿瘤细胞的肺转移 | 第50-52页 |
| 4.6 Imatinib可显著抑制肿瘤原发部位和转移灶处TAM的M2型极化 | 第52-55页 |
| 4.7 CSF1R信号通路、CEBP/β信号通路、Erk信号通路不参与Imatinib对IL-13诱导的M2型极化的抑制作用 | 第55-58页 |
| 4.8 Imatinib通过抑制STAT6的磷酸化,抑制其入核发挥调控巨噬细胞M2型极化的作用 | 第58-61页 |
| 5 讨论 | 第61-65页 |
| 参考文献 | 第65-70页 |
| 综述 | 第70-87页 |
| 参考文献 | 第81-87页 |
| 作者简介及在读期间取得的科研成果 | 第87-88页 |
