| 摘要 | 第1-5页 |
| ABSTRACT | 第5-11页 |
| 第一章 文献综述 | 第11-31页 |
| ·生物能源气 | 第11-14页 |
| ·生物能源气的开发利用 | 第11-12页 |
| ·生物能源气的组成 | 第12页 |
| ·生物能源气中杂质的来源 | 第12-13页 |
| ·生物能源气中杂质的危害 | 第13-14页 |
| ·生物能源气净化的意义 | 第14页 |
| ·生物能源气净化的国内外研究现状 | 第14-26页 |
| ·生物能源气中脱除H_2S的研究现状 | 第14-19页 |
| ·生物能源气中脱除甲硫醇的研究现状 | 第19-22页 |
| ·生物能源气中脱除硅氧烷的研究现状 | 第22-26页 |
| ·生物滴滤塔的研究现状 | 第26-28页 |
| ·生物滴滤塔的填料及结构的研究 | 第26-27页 |
| ·生物滴滤塔的应用研究 | 第27页 |
| ·生物滴滤塔应用中存在的主要问题 | 第27-28页 |
| ·本课题研究的主要内容 | 第28-31页 |
| 第二章 生物脱除H_2S的初步研究 | 第31-47页 |
| ·引言 | 第31页 |
| ·材料和方法 | 第31-38页 |
| ·分离基质 | 第31页 |
| ·培养基 | 第31-32页 |
| ·菌株的分离纯化方法 | 第32-33页 |
| ·菌株的 16S rDNA序列的测定 | 第33-35页 |
| ·分析方法 | 第35-36页 |
| ·菌株生长特性实验 | 第36页 |
| ·实验装置 | 第36页 |
| ·生物滴滤塔实验 | 第36-38页 |
| ·实验结果与讨论 | 第38-46页 |
| ·菌种的分离 | 第39页 |
| ·菌种的系统发育分析 | 第39-40页 |
| ·溶液中SO_4~(2-)检测方法的确定 | 第40-42页 |
| ·菌株培养条件的确定 | 第42-44页 |
| ·生物滴滤塔的挂膜启动 | 第44-45页 |
| ·生物滴滤塔脱除H_2S的效果 | 第45-46页 |
| ·本章小结 | 第46-47页 |
| 第三章 生物脱除MT的过程研究 | 第47-69页 |
| ·引言 | 第47-48页 |
| ·材料与方法 | 第48-54页 |
| ·实验材料 | 第48页 |
| ·实验仪器 | 第48页 |
| ·培养基 | 第48-49页 |
| ·MT降解菌株的分离纯化方法 | 第49页 |
| ·降解MT菌株的鉴定方法 | 第49-50页 |
| ·MT的检测方法 | 第50页 |
| ·不同培养基对菌株生长的影响 | 第50-51页 |
| ·初始p H对菌体生长的影响 | 第51页 |
| ·培养过程中培养基p H的变化 | 第51页 |
| ·批培养过程中菌株Y5降解MT的实验 | 第51页 |
| ·生物滴滤塔实验装置 | 第51-53页 |
| ·营养液的吸收对联和塔脱除MT的影响 | 第53页 |
| ·生物滴滤塔的挂膜与驯化 | 第53页 |
| ·营养液组成对联合塔脱除MT的影响 | 第53-54页 |
| ·营养液流速对联合塔脱除MT的影响 | 第54页 |
| ·溶解氧对联和塔脱除MT的影响 | 第54页 |
| ·结果与讨论 | 第54-67页 |
| ·菌株CZ05的分离与鉴定 | 第54-56页 |
| ·MT的检测方法的建立 | 第56-57页 |
| ·P. polymyxa CZ05生长特性的研究 | 第57-61页 |
| ·联合塔脱除MT实验条件的确定 | 第61-67页 |
| ·本章小结 | 第67-69页 |
| 第四章 联合塔脱除MT的机理研究 | 第69-77页 |
| ·引言 | 第69页 |
| ·材料与方法 | 第69-70页 |
| ·实验材料 | 第69页 |
| ·联合塔内传质的测定实验 | 第69-70页 |
| ·MT降解产物的测定 | 第70页 |
| ·MT氧化酶的提取方法 | 第70页 |
| ·结果与讨论 | 第70-75页 |
| ·气-液两相间传质机理的确定 | 第70-72页 |
| ·P. polymyxa CZ05分泌的碱性物质与MT的反应 | 第72-73页 |
| ·P. P. polymyxa CZ05降解MT途径的确定 | 第73-74页 |
| ·MT氧化酶位置的确定 | 第74-75页 |
| ·本章小结 | 第75-77页 |
| 第五章 生物法脱除硅氧烷的初步研究 | 第77-91页 |
| ·引言 | 第77页 |
| ·实验材料与方法 | 第77-80页 |
| ·实验材料 | 第77页 |
| ·菌株的富集和分离 | 第77-78页 |
| ·菌株的鉴定 | 第78页 |
| ·D4的分析方法 | 第78页 |
| ·生物滴滤塔操作 | 第78-80页 |
| ·实验结果与讨论 | 第80-90页 |
| ·菌株的分离与鉴定 | 第80-82页 |
| ·D4的纯度检测 | 第82-83页 |
| ·D4检测方法的建立 | 第83-84页 |
| ·营养液的吸收对脱除效果的影响 | 第84-85页 |
| ·进口D4浓度对生物滴滤塔脱除D4效果的影响 | 第85-86页 |
| ·营养液的流速对生物滴滤塔脱除D4效果的影响 | 第86-87页 |
| ·EBRT对生物滴滤塔脱除D4效果的影响 | 第87-88页 |
| ·葡萄糖的加入对生物滴滤塔脱除D4效果的影响 | 第88-89页 |
| ·溶氧对脱除效果的影响 | 第89-90页 |
| ·本章小结 | 第90-91页 |
| 第六章 联合脱除硫化物和硅氧烷的研究 | 第91-99页 |
| ·引言 | 第91页 |
| ·实验材料和方法 | 第91-93页 |
| ·菌株P. putida H4和P. polymyxa CZ05的共培养实验 | 第91页 |
| ·H_2S对MT脱除效果的实验 | 第91-92页 |
| ·同步脱除MT和H_2S的实验 | 第92页 |
| ·D4对H_2S和MT脱除效果的实验 | 第92页 |
| ·硫化物和硅氧烷的联合脱除实验 | 第92-93页 |
| ·实验结果与讨论 | 第93-97页 |
| ·菌株P. putida H4和P. polymyxa CZ05的共培养 | 第93页 |
| ·H_2S和MT的同步脱除 | 第93-96页 |
| ·D4对H_2S和MT脱除效果的影响 | 第96-97页 |
| ·联合脱除H_2S、MT和D4 | 第97页 |
| ·本章小结 | 第97-99页 |
| 第七章 生物滴滤塔内微生物生态学研究 | 第99-107页 |
| ·引言 | 第99页 |
| ·实验材料和方法 | 第99-101页 |
| ·塔内孔隙率的测定 | 第99页 |
| ·群落PCR克隆实验 | 第99-100页 |
| ·PCR-DGGE实验 | 第100页 |
| ·Biolog测定群落实验 | 第100-101页 |
| ·实验结果与讨论 | 第101-104页 |
| ·生物滴滤塔内生物膜的分布 | 第101-102页 |
| ·生物膜上的微生物组成 | 第102-103页 |
| ·生物滴滤塔内微生物的活性和代谢特征 | 第103-104页 |
| ·本章小结 | 第104-107页 |
| 第八章 结论与展望 | 第107-111页 |
| ·本文主要研究结论 | 第107-108页 |
| ·主要创新点 | 第108-109页 |
| ·对今后工作的建议与展望 | 第109-111页 |
| 参考文献 | 第111-121页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第121-123页 |
| 附录 | 第123-131页 |
| 致谢 | 第131-132页 |
