| 摘要 | 第1-5页 |
| ABSTRACT | 第5-8页 |
| 1 前言 | 第8-19页 |
| ·肝癌 | 第8页 |
| ·炎症与癌症 | 第8-9页 |
| ·炎症与致癌性 | 第8-9页 |
| ·炎症微环境与肿瘤 | 第9页 |
| ·氧化与癌症 | 第9-10页 |
| ·自由基与癌症 | 第9页 |
| ·氧化压力与癌症 | 第9-10页 |
| ·熊果酸概述 | 第10-13页 |
| ·熊果酸的理化性质 | 第10-11页 |
| ·熊果酸的分布 | 第11页 |
| ·熊果酸的生物活性 | 第11-13页 |
| ·多糖概述 | 第13-14页 |
| ·多糖分类及活性研究 | 第13页 |
| ·多糖诱导肿瘤细胞凋亡的机制 | 第13-14页 |
| ·协同作用研究 | 第14页 |
| ·viili概述 | 第14页 |
| ·黄芪多糖 | 第14-15页 |
| ·黄芪概述 | 第14-15页 |
| ·黄芪多糖的生理活性 | 第15页 |
| ·环氧化酶 | 第15-17页 |
| ·COX与炎症 | 第16页 |
| ·COX-2与癌症 | 第16-17页 |
| ·COX-2抗炎抗氧化途径 | 第17页 |
| ·本论文的研究目的及意义 | 第17-19页 |
| 2 材料与方法 | 第19-33页 |
| ·材料 | 第19-23页 |
| ·供试材料 | 第19页 |
| ·主要试剂 | 第19-21页 |
| ·仪器与设备 | 第21-22页 |
| ·主要溶液及培养基的配制 | 第22-23页 |
| ·试验方法 | 第23-32页 |
| ·体外抗氧化活性的测定 | 第23-24页 |
| ·细胞培养方法 | 第24-25页 |
| ·MTT法检测细胞生长活性 | 第25-26页 |
| ·扫描电镜观察细胞形态 | 第26页 |
| ·流式细胞仪检测细胞周期 | 第26-27页 |
| ·细胞内源SOD活力的测定 | 第27页 |
| ·细胞内MDA含量的测定 | 第27-28页 |
| ·RT-qPCR检测COX-2 mRNA的表达 | 第28-29页 |
| ·蛋白质免疫印迹检测COX-2蛋白的表达 | 第29-31页 |
| ·ELISA法检测细胞内COX-2的含量 | 第31页 |
| ·ELISA法检测细胞释放PGE_2的含量 | 第31-32页 |
| ·统计学方法 | 第32-33页 |
| 3 结果与讨论 | 第33-49页 |
| ·体外抗氧化活性测定 | 第33-35页 |
| ·样品还原力的测定 | 第33页 |
| ·样品对羟自由基的清除能力 | 第33-34页 |
| ·样品对DPPH自由基的清除能力 | 第34-35页 |
| ·肝癌细胞HepG2的形态学观察 | 第35页 |
| ·样品对HepG2细胞的作用 | 第35-49页 |
| ·样品对HepG2细胞的抑制作用 | 第35-38页 |
| ·样品对HepG2细胞形态的扫描电镜观察 | 第38页 |
| ·样品对HepG2细胞周期的流式细胞仪分析 | 第38-39页 |
| ·样品对HepG2细胞内SOD活力的影响 | 第39-40页 |
| ·样品对HepG2细胞内MDA含量的影响 | 第40-41页 |
| ·样品对HepG2细胞内COX-2 mRNA表达的影响 | 第41-43页 |
| ·样品对HepG2细胞内COX-2蛋白表达的影响 | 第43-44页 |
| ·ELISA测定样品对HepG2细胞内COX-2含量的影响 | 第44-46页 |
| ·ELISA测定样品对HepG2细胞释放PGE_2含量的影响 | 第46-49页 |
| 4 结论 | 第49-50页 |
| 5 展望 | 第50-51页 |
| 6 参考文献 | 第51-59页 |
| 7 攻读硕士学位期间发表论文情况 | 第59-60页 |
| 8 致谢 | 第60页 |
