| 中文摘要 | 第1-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 英文缩写符号及中英文对照表 | 第8-10页 |
| 第一部分 文献综述 | 第10-17页 |
| 1 子痫前期 | 第10-11页 |
| 2 蜕膜化 | 第11-12页 |
| 3 COX2 | 第12-13页 |
| 4 研究思路与意义 | 第13-17页 |
| ·研究背景 | 第13-15页 |
| ·研究内容 | 第15-16页 |
| ·研究思路 | 第16页 |
| ·研究意义 | 第16-17页 |
| 第二部分 | 第17-56页 |
| 第一章 重度子痫前期组与对照组的孕妇临床信息比较 | 第17-20页 |
| 1 蜕膜组织的收集与处理 | 第17页 |
| ·组织收集 | 第17页 |
| ·组织处理 | 第17页 |
| 2 研究对象的筛选与分组 | 第17-18页 |
| 3 结果 | 第18-19页 |
| 4 讨论 | 第19-20页 |
| 第二章 COX2在NP与s PE蜕膜组织中的定位与表达 | 第20-25页 |
| 1 实验材料与方法 | 第20-23页 |
| ·实验仪器与试剂 | 第20-21页 |
| ·冰冻切片与免疫组化 | 第21-23页 |
| 2 实验结果 | 第23-24页 |
| 3 讨论 | 第24-25页 |
| 第三章 COX2 mRNA与蛋白质在NP与sPE中的表达情况 | 第25-36页 |
| 1 实验材料与方法 | 第25-33页 |
| ·实验仪器与试剂 | 第25-28页 |
| ·蜕膜组织中RNA的提取 | 第28-30页 |
| ·蜕膜组织中蛋白质的提取与蛋白质免疫印迹 | 第30-33页 |
| 2 实验结果 | 第33-34页 |
| ·Real-Time PCR结果 | 第33页 |
| ·蛋白质免疫印迹结果 | 第33-34页 |
| 3 讨论 | 第34-36页 |
| 第四章 COX2在子宫内膜基质细胞体外诱导蜕膜化后的表达 | 第36-46页 |
| 1 实验材料与方法 | 第36-41页 |
| ·实验仪器与试剂 | 第36-37页 |
| ·子宫内膜基质细胞体外培养与诱导分化 | 第37-39页 |
| ·子宫内膜基质细胞中RNA的提取 | 第39-40页 |
| ·子宫内膜基质细胞中蛋白质的提取 | 第40-41页 |
| 2 实验结果 | 第41-45页 |
| ·子宫内膜基质细胞体外诱导蜕膜化形态 | 第41-43页 |
| ·Real-Time PCR结果 | 第43-44页 |
| ·蛋白质免疫印迹结果 | 第44-45页 |
| 3 讨论 | 第45-46页 |
| 第五章 COX2与人类蜕膜化的关系研究 | 第46-51页 |
| 1 实验材料与方法 | 第46-47页 |
| ·实验仪器、试剂与材料 | 第46页 |
| ·子宫内膜基质细胞的不同处理方式 | 第46-47页 |
| ·子宫内膜基质细胞中RNA与蛋白质的提取 | 第47页 |
| 2 实验结果 | 第47-49页 |
| ·不同方式处理后子宫内膜基质细胞的形态 | 第47-48页 |
| ·Real-Time PCR结果 | 第48-49页 |
| ·蛋白质免疫印迹结果 | 第49页 |
| 3 讨论 | 第49-51页 |
| 第六章 干扰COX2表达对子宫内膜基质细胞蜕膜化的影响 | 第51-56页 |
| 1 实验材料与方法 | 第51页 |
| ·实验仪器与试剂 | 第51页 |
| ·细胞的转染 | 第51页 |
| ·细胞中RNA的提取与蛋白质免疫印迹 | 第51页 |
| 2 实验结果 | 第51-54页 |
| ·干扰COX2表达后细胞的形态变化 | 第51-52页 |
| ·Real-Time PCR结果 | 第52-53页 |
| ·蛋白质免疫印迹结果 | 第53-54页 |
| 3 讨论 | 第54-56页 |
| 总结 | 第56-58页 |
| 参考文献 | 第58-64页 |
| 致谢 | 第64-66页 |
| 硕士期间发表的论文 | 第66页 |
