| 摘要 | 第1-8页 |
| Abstract | 第8-11页 |
| 英文缩略词表 | 第11-12页 |
| 第1章：绪论 | 第12-21页 |
| 1. 基因敲除技术简介 | 第12-14页 |
| 2. Trio基因的研究进展简介 | 第14-21页 |
| ·Trio基因的简介 | 第14-15页 |
| ·Trio蛋白的结构研究 | 第15-16页 |
| ·Trio蛋白在神经细胞生长中的作用研究 | 第16-17页 |
| ·Trio基因在模式动物中的研究 | 第17-18页 |
| ·目前所面临的问题及解决办法 | 第18-21页 |
| 第2章：实验材料及方法 | 第21-42页 |
| 1. 实验材料 | 第21-27页 |
| ·实验动物 | 第21-22页 |
| ·实验试剂 | 第22-26页 |
| ·基因型鉴定 | 第22-23页 |
| ·Western Blot | 第23-24页 |
| ·石蜡切片H&E染色 | 第24-26页 |
| ·杂品与耗材 | 第26页 |
| ·所需仪器 | 第26-27页 |
| 2. 实验方法 | 第27-42页 |
| ·Trio基因条件敲除小鼠的构建 | 第27-28页 |
| ·EMX1-Trio~(-/-)小鼠的基因型鉴定 | 第28-30页 |
| ·提取鼠尾基因组 | 第28页 |
| ·PCR扩增鼠尾基因组 | 第28-29页 |
| ·PCR产物琼脂糖凝胶电泳 | 第29-30页 |
| ·Western blot检测Trio蛋白 | 第30-35页 |
| ·提取海马组织蛋白 | 第30-31页 |
| ·蛋白样品的SDS-PAGE电泳 | 第31-33页 |
| ·Western Blot电泳蛋白转膜 | 第33页 |
| ·对转膜后的PVDF膜进行封闭 | 第33页 |
| ·PVDF膜的抗体孵育 | 第33-34页 |
| ·抗体孵育后PVDF膜显影定影 | 第34-35页 |
| ·Morris水迷宫测试 | 第35-37页 |
| ·Morris水迷宫测试的准备工作 | 第35-36页 |
| ·获得性训练(Acquisition Phase) | 第36页 |
| ·探查训练(Probe Trial 1) | 第36-37页 |
| ·Morris水迷宫实验注意事项 | 第37页 |
| ·场景性恐惧条件测试 | 第37-39页 |
| ·场景性恐惧测试步骤 | 第38-39页 |
| ·场景性恐惧测试注意事项 | 第39页 |
| ·组织切片分析 | 第39-42页 |
| ·小鼠大脑石蜡切片步骤 | 第39-41页 |
| ·小鼠大脑石蜡切片H&E染色 | 第41-42页 |
| ·数据处理及统计分析 | 第42页 |
| 第3章：实验结果 | 第42-49页 |
| 1. Trio基因在EMX1-Trio~(-/-)小鼠海马组织中被敲除 | 第42-43页 |
| 2. EMX1-Trio~(-/-)小鼠的总体形态出现异常 | 第43-44页 |
| 3. EMX1-Trio~(-/-)成年小鼠的智力水平显著下降 | 第44-47页 |
| 4. EMX1-Trio~(-/-)小鼠的海马结构出现畸形 | 第47-49页 |
| 第4章：讨论 | 第49-57页 |
| 1. 小鼠的发育受到Trio基因的调控 | 第51-54页 |
| ·Trio基因控制小鼠大脑的发育 | 第51-52页 |
| ·Trio基因敲除影响了EMX1-Trio~(-/-)小鼠的体重及脑重 | 第52-54页 |
| ·小鼠的体重受到Trio基因的调控 | 第53页 |
| ·EMX1-Trio~(-/-)小鼠的脑重受到Trio基因敲除的影响 | 第53-54页 |
| 2. EMX1-Trio~(-/-)小鼠的海马损伤导致小鼠的学习能力下降 | 第54-56页 |
| ·小鼠的海马决定着小鼠智力水平的形成 | 第54-55页 |
| ·Trio基因的敲除导致EMX1-Trio~(-/-)小鼠海马的畸形及智力的下降 | 第55-56页 |
| 3. EMX1-Trio~(-/-)小鼠可为人类神经性疾病的研究提供材料 | 第56-57页 |
| 第5章：结论 | 第57-58页 |
| 主要参考文献 | 第58-62页 |
| 攻读学位期间发表的论文 | 第62页 |
| 致谢 | 第62-63页 |
| 学位论文评阅及答辩情况表 | 第63页 |
