| 中文摘要 | 第1-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 缩略词对照表 | 第9-10页 |
| 1 引言 | 第10-13页 |
| 2 化瘀散结片对Dispase Ⅰ诱导的PVR兔视网膜Muller细胞中GFAP和VIM表达的影响 | 第13-29页 |
| ·实验材料 | 第13-15页 |
| ·实验动物 | 第13-14页 |
| ·实验药品及主要试剂 | 第14页 |
| ·主要试剂配制方法 | 第14-15页 |
| ·主要仪器 | 第15页 |
| ·实验方法 | 第15-19页 |
| ·造模方法 | 第15-16页 |
| ·分组方法 | 第16页 |
| ·给药方法 | 第16页 |
| ·观察指标与方法 | 第16-19页 |
| ·眼底观察 | 第16-17页 |
| ·常规组织病理学观察 | 第17-18页 |
| ·GFAP免疫组化染色 | 第18页 |
| ·VIM免疫组化染色 | 第18-19页 |
| ·统计学处理 | 第19-20页 |
| ·实验结果与分析 | 第20-29页 |
| ·眼底观察结果 | 第20-24页 |
| ·PVR兔常规组织病理学结果 | 第24-25页 |
| ·GFAP免疫组化染色结果 | 第25-26页 |
| ·化瘀散结片对实验性PVR动物模型GFAP表达的影响 | 第26-27页 |
| ·VIM免疫组化染色结果 | 第27页 |
| ·化瘀散结片对实验性PVR动物模型VIM表达的影响 | 第27-29页 |
| 3 化瘀散结片对体外纯化培养的视网膜Muller细胞增生的影响 | 第29-35页 |
| ·实验材料 | 第29-31页 |
| ·实验动物 | 第29页 |
| ·实验试剂及仪器 | 第29-31页 |
| ·细胞培养用试剂及其配制 | 第29-30页 |
| ·实验仪器 | 第30-31页 |
| ·视网膜Muller细胞鉴定所用试剂 | 第31页 |
| ·制备化瘀散结片复方含药血清所用仪器 | 第31页 |
| ·实验方法 | 第31-33页 |
| ·视网膜Muller细胞的培养方法 | 第31-32页 |
| ·视网膜Muller细胞的鉴定方法 | 第32-33页 |
| ·细胞固定 | 第32页 |
| ·细胞鉴定 | 第32页 |
| ·化瘀散结片含药血清制备方法 | 第32页 |
| ·实验分组方法 | 第32-33页 |
| ·视网膜Muller细胞凋亡率测定方法 | 第33页 |
| ·统计分析方法 | 第33页 |
| ·结果与分析 | 第33-35页 |
| ·体外纯化培养视网膜Muller细胞的形态学特征及体外生长情况 | 第33-34页 |
| ·视网膜Muller细胞鉴定结果 | 第34页 |
| ·化瘀散结片含药血清对兔视网膜Muller细胞增生的影响 | 第34-35页 |
| 4 讨论 | 第35-47页 |
| ·祖国医学对PVR的认识 | 第35-36页 |
| ·Muller细胞在PVR形成中的作用 | 第36-37页 |
| ·造模用DispaseⅠ的选择依据 | 第37-38页 |
| ·化瘀散结片的组方依据及其组成药物的现在药理学研究 | 第38-42页 |
| ·化瘀散结片的组方依据 | 第38-39页 |
| ·化瘀散结片中药物的现代药理学研究 | 第39-42页 |
| ·道诺霉素的选择依据 | 第42页 |
| ·化瘀散结片抑制PVR模型Muller细胞增生的作用机制探讨 | 第42-47页 |
| ·减轻PVR动物模型眼底增生程度 | 第42-43页 |
| ·抑制PVR模型Muller细胞中GFAP的表达 | 第43-44页 |
| ·抑制PVR模型Muller细胞中VIM的表达 | 第44-45页 |
| ·抑制体外培养的Muller细胞增生 | 第45-47页 |
| 5 结论 | 第47-48页 |
| 6 问题与展望 | 第48-49页 |
| 7 致谢 | 第49-50页 |
| 8 参考文献 | 第50-58页 |
| 9 综述 | 第58-72页 |
| 参考文献 | 第65-72页 |
| 附图 | 第72-78页 |
| 在读期间公开发表的学术论文、专著及科研成果 | 第78-79页 |
