| 摘要 | 第1-5页 |
| Abstract | 第5-9页 |
| 1 绪论 | 第9-17页 |
| ·转基因白桦的研究背景 | 第9页 |
| ·表观遗传学 | 第9-10页 |
| ·DNA甲基化 | 第9-10页 |
| ·环境调控及转基因沉默 | 第10页 |
| ·NO供体(硝普钠)对植物表观遗传的影响 | 第10-12页 |
| ·NO的合成途径 | 第10-11页 |
| ·NO参与植物次生代谢产物的合成及信号转导 | 第11页 |
| ·NO诱导细胞的程序性死亡 | 第11-12页 |
| ·NO对DNA甲基化的影响 | 第12页 |
| ·其它信号分子对植物表观遗传的影响 | 第12-13页 |
| ·逆境下保护酶活性的变化 | 第13-14页 |
| ·植物活性氧代谢 | 第13页 |
| ·NO对保护酶活性的影响 | 第13-14页 |
| ·水杨酸对保护酶活性的影响 | 第14页 |
| ·分子标记的研究与进展情况 | 第14-16页 |
| ·形态学标记 | 第14页 |
| ·细胞学标记 | 第14-15页 |
| ·蛋白质标记 | 第15页 |
| ·DNA分子标记 | 第15-16页 |
| ·本研究的目的和意义 | 第16-17页 |
| 2 NO和SA对转基因白桦甲基转移酶基因及外源基因表达的影响 | 第17-27页 |
| ·材料与方法 | 第17-19页 |
| ·材料来源 | 第17页 |
| ·材料处理 | 第17-19页 |
| ·试验方法 | 第19-21页 |
| ·CTAB法提取白桦愈伤组织总RNA | 第19页 |
| ·DNA消化 | 第19页 |
| ·RNA质量的检测和浓度的测定 | 第19-20页 |
| ·反转录获得cDNA | 第20页 |
| ·荧光定量PCR | 第20-21页 |
| ·结果分析 | 第21-25页 |
| ·愈伤组织总RNA提取 | 第21页 |
| ·第一链cDNA的获得 | 第21页 |
| ·荧光定量PCR | 第21页 |
| ·2mmol/LSNP处理对愈伤组织甲基转移酶基因和外源基因表达的影响 | 第21-23页 |
| ·50mg/LSA处理对愈伤组织甲基转移酶基因和外源基因表达的影响 | 第23-25页 |
| ·讨论 | 第25-26页 |
| ·本章小结 | 第26-27页 |
| 3 NO和SA对转基因白桦愈伤组织生理指标的影响 | 第27-45页 |
| ·材料处理 | 第27页 |
| ·实验方法 | 第27-29页 |
| ·酶液的制取 | 第27页 |
| ·超氧化物歧化酶SOD的测定方法 | 第27页 |
| ·过氧化氢酶CAT的测定方法 | 第27-28页 |
| ·过氧化物酶POD的测定方法 | 第28页 |
| ·丙二醛MDA的测定方法 | 第28页 |
| ·苯丙氨酸解氨酶PAL的测定方法 | 第28页 |
| ·数据处理 | 第28-29页 |
| ·结果分析 | 第29-41页 |
| ·2mmoL/LSNP处理愈伤组织生理指标分析 | 第29-35页 |
| ·50mg/LSA处理愈伤组织生理指标分析 | 第35-41页 |
| ·讨论 | 第41-43页 |
| ·2mmol/LSNP对保护酶活性的影响 | 第41-42页 |
| ·50mg/LSA对保护酶活性的影响 | 第42-43页 |
| ·本章小结 | 第43-45页 |
| 4 甲基化敏感酶酶切结合RAPD分子标记技术研究转基因白桦的表观遗传变异 | 第45-52页 |
| ·材料处理 | 第45页 |
| ·试验方法 | 第45-47页 |
| ·CTAB法提取白桦愈伤组织DNA | 第45页 |
| ·DNA双酶切 | 第45页 |
| ·引物的筛选 | 第45-47页 |
| ·结果分析 | 第47-50页 |
| ·植株基因组DNA的提取与纯化 | 第47页 |
| ·酶切条件的选择 | 第47页 |
| ·扩增结果分析 | 第47-50页 |
| ·讨论 | 第50-51页 |
| ·本章小结 | 第51-52页 |
| 结论 | 第52-53页 |
| 参考文献 | 第53-58页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文 | 第58-59页 |
| 致谢 | 第59-60页 |
