| 中文摘要 | 第1-8页 |
| Abstract | 第8-9页 |
| 中英文对照缩写表 | 第9-10页 |
| 前言 | 第10-13页 |
| 实验一 IGF-I-GMs 的制备及其性质检测 | 第13-23页 |
| 1.材料 | 第13页 |
| ·主要仪器 | 第13页 |
| ·主要试剂 | 第13页 |
| 2.方法 | 第13-17页 |
| ·明胶微球制备和筛选 | 第13-14页 |
| ·明胶微球干燥消毒 | 第14页 |
| ·IGF-I-GMs 的制备及粒径分析 | 第14-15页 |
| ·检测 IGF-I-GMs 的体外释药特性 | 第15-16页 |
| ·IGF-I-GMs 的载药率及包封率的测定 | 第16页 |
| ·.IGF-I-GMs 的体外降解特性 | 第16-17页 |
| ·统计学分析 | 第17页 |
| 3.实验结果 | 第17-20页 |
| ·微球的形态特征 | 第17页 |
| ·IGF-I-GMs 体外释药特性 | 第17-18页 |
| ·IGF-I-GMs 的体外降解特性 | 第18-20页 |
| 4.讨论 | 第20-23页 |
| 实验二 IGF-I-GMs 对 BMSCs 增殖分化的影响 | 第23-34页 |
| 1.材料 | 第23-24页 |
| ·主要仪器 | 第23页 |
| ·主要试剂 | 第23-24页 |
| 2.方法 | 第24-26页 |
| ·所需试剂的配制 | 第24页 |
| ·兔 BMSCs 的分离与培养 | 第24-25页 |
| ·观察 BMSCs 形态及绘制生长曲线 | 第25页 |
| ·IGF-I 和 IGF-I-GMs 对 BMSCs 增殖分化的影响 | 第25-26页 |
| ·统计学分析 | 第26页 |
| 3 结果 | 第26-30页 |
| ·BMSCs 的形态学观察 | 第26-28页 |
| ·BMSCs 的生长曲线 | 第28页 |
| ·MTT 法检测 BMSCs 的增殖 | 第28页 |
| ·PNPP 偶氮法检测碱性磷酸酶活性 | 第28-29页 |
| ·IGF-I 和 IGF-I-GMs 对 BMSCs 增殖分化的影响 | 第29-30页 |
| 4 讨论 | 第30-34页 |
| 结论 | 第34-35页 |
| 参考文献 | 第35-39页 |
| 综述 | 第39-50页 |
| 摘要 | 第39页 |
| Abstract | 第39-40页 |
| 1.组织工程学和骨组织工程 | 第40页 |
| 2.种子细胞 | 第40-42页 |
| ·骨髓基质干细胞 | 第40-41页 |
| ·胚胎干细胞 | 第41-42页 |
| 3.骨组织工程相关生长因子 | 第42-44页 |
| ·骨形态发生蛋白(BMP) | 第42页 |
| ·血管内皮生长因子(VEGF) | 第42-43页 |
| ·碱性成纤维细胞生成因子(bFGF) | 第43页 |
| ·转化生长因子-β(TGF-β) | 第43页 |
| ·胰岛素样生长因子(IGF) | 第43-44页 |
| 4.生长因子缓释微球 | 第44-46页 |
| ·多聚体 | 第44页 |
| ·壳聚糖 | 第44-45页 |
| ·明胶 | 第45-46页 |
| 参考文献 | 第46-50页 |
| 个人简介 | 第50-51页 |
| 致谢 | 第51页 |
