摘要 | 第1-5页 |
Abstract | 第5-10页 |
前言 | 第10-21页 |
1. PCR及其相关方法 | 第12-15页 |
·一般PCR | 第12页 |
·限制性片段的长度多态性(RFLP) | 第12-13页 |
·聚合酶链式反应连接的限制性片段长度多态性(PCR-RFLP) | 第13-14页 |
·随机扩增多态性DNA技术(RAPD) | 第14-15页 |
·DNA序列分析 | 第15页 |
2. 基因突变检测方法 | 第15-18页 |
·单链构象多态性分析(SSCP) | 第15-16页 |
·单核苷酸多态性(SNP) | 第16-17页 |
·表达序列标签(EST) | 第17-18页 |
3. 研究中所用特定DNA序列的选取 | 第18-20页 |
·ITS(internal transcribed spacer)内转录间隔区 | 第18-19页 |
·mtDNA-线粒体DNA | 第19-20页 |
4. 本实验的研究目的与意义 | 第20-21页 |
第一章 动物蜱形态学鉴定 | 第21-30页 |
1. 材料与方法 | 第21-22页 |
·材料 | 第21页 |
·蜱 | 第21页 |
·鉴定方法 | 第21-22页 |
2. 结果 | 第22-29页 |
·鉴定品种 | 第22页 |
·各类蜱的形态特点 | 第22-29页 |
·消色牛蜱(Boophilus decoloratus) | 第22-23页 |
·丽色扇头蜱(Rhipicephalus pulchellus) | 第23页 |
·微小牛蜱(Boophilus microplus) | 第23页 |
·褐黄血蜱(Haemaphysalis flava) | 第23页 |
·璃眼蜱属(Hyalomma) | 第23页 |
·花蜱属(Amblyomma) | 第23-24页 |
·未定种蜱 | 第24-29页 |
3. 讨论 | 第29-30页 |
第二章 动物蜱rDNA ITS序列多态性的研究 | 第30-55页 |
1. 材料与方法 | 第30-37页 |
·材料 | 第30-33页 |
·蜱样品 | 第30-31页 |
·工程菌 | 第31页 |
·载体 | 第31页 |
·酶类及试剂 | 第31-33页 |
·方法 | 第33-37页 |
·虫体的处理和DNA提取 | 第33-34页 |
·蜱rDNA ITS片段的扩增 | 第34-36页 |
·引物 | 第34-35页 |
·PCR扩增 | 第35-36页 |
·琼脂糖电泳分析 | 第36页 |
·PCR扩增产物回收纯化 | 第36-37页 |
·代表性蜱样品的rDNA ITS-1、ITS-2片段的序列测定 | 第37页 |
·DNA序列分析 | 第37页 |
2 结果与分析 | 第37-51页 |
·PCR扩增结果 | 第37-39页 |
·测序结果与分析 | 第39-51页 |
·ITS-1基因序列片段的测序结果 | 第39页 |
·ITS-1测序结果分析 | 第39-42页 |
·ITS-1序列差异性分析 | 第42-43页 |
·ITS-1序列分析结果 | 第43-44页 |
·ITS-2测序结果分析 | 第44-49页 |
·ITS-2序列差异性分析 | 第49-50页 |
·ITS-2序列分析结果 | 第50-51页 |
3. 讨论 | 第51-55页 |
第三章 动物蜱线粒体pcox1基因多态性分析 | 第55-71页 |
1 材料与方法 | 第55-57页 |
·材料 | 第55页 |
·蜱样品 | 第55页 |
·工程菌 | 第55页 |
·主要试剂 | 第55页 |
·方法 | 第55-57页 |
·虫体的处理和DNA提取 | 第55-56页 |
·蜱mtDNA cox1片断的PCR扩增 | 第56-57页 |
·PCR扩增产物回收与纯化 | 第57页 |
·蜱样品的cox1基因片段的序列测定 | 第57页 |
·DNA序列分析 | 第57页 |
2 结果与分析 | 第57-68页 |
·PCR扩增结果 | 第57-58页 |
·测序结果及分析 | 第58-68页 |
·cox1基因片段的测序结果 | 第58页 |
·测序结果分析 | 第58-66页 |
·cox1序列差异性分析 | 第66-67页 |
·序列相似性分析及遗传关系分析 | 第67-68页 |
3. 讨论 | 第68-71页 |
全文结论 | 第71-72页 |
参考文献 | 第72-79页 |
附图1 质粒pGEM-T easy基因图谱 | 第79-80页 |
附图2 核糖体DNA重复序列 | 第80-81页 |
致谢 | 第81-83页 |
作者简介 | 第83-84页 |