| 中文摘要 | 第1-11页 |
| 英文摘要 | 第11-14页 |
| 前言 | 第14-16页 |
| 文献综述 | 第16页 |
| 一． 植物花发育遗传的研究进展 | 第16-23页 |
| 1． 花发育的同源异型突变 | 第16-17页 |
| 2． 花器官发育特性的“ ABC”模式 | 第17-19页 |
| 2．1 早期的花器官发育模型 | 第18页 |
| 2．2 “ABC”模式的提出 | 第18页 |
| 2．3 “ABC”模型的发展 | 第18-19页 |
| 2．4 拟南芥和金鱼草中“A”、“B”、“C”三类基因及其特征 | 第19页 |
| 3． 植物MADS-box基因的研究进展 | 第19-21页 |
| 3．1 植物MADS-box基因的命名 | 第19-20页 |
| 3．2 MADS-box基因的序列特性 | 第20页 |
| 3．3 植物的MADS-box的分布及其功能 | 第20-21页 |
| 3．4 植物MADS-box基因的分类 | 第21页 |
| 3．5 植物MADS-box基因的多效性 | 第21页 |
| 4． 拟南芥花发育分生组织和花结构特性基因 | 第21-23页 |
| 二． 水稻花发育研究进展 | 第23-28页 |
| 1． 水稻营养型突变体的发现与研究进展 | 第23-24页 |
| 2． 水稻花序发育的研究进展 | 第24-25页 |
| 3． 水稻花器官发育的研究进展 | 第25-28页 |
| 3．1 水稻花器官特异性与“ ABC”模型适宜范围的讨论 | 第25-26页 |
| 3．2 水稻花器官发育突变体的发现和研究 | 第26页 |
| 3．3 水稻花器官分子发育研究进展 | 第26-28页 |
| 三． 植物花发育基因的相互作用 | 第28-32页 |
| 1． 两个基因的互作类型 | 第28-29页 |
| 2． 植物花发育基因间的互作分析所揭示的花发育问题 | 第29-32页 |
| 2．1 植物花序发育调节模型的提出 | 第29页 |
| 2．2 植物花分生组织特性基因的功能冗余 | 第29-30页 |
| 2．3 植物花分生组织特征基因之间的互作 | 第30页 |
| 2．4 花器官特征基因之间的相互作用 | 第30-32页 |
| 四． 分子标记与植物基因分离 | 第32-41页 |
| 1． 分子标记技术研究进展 | 第32-34页 |
| 2． 微卫星的生物学特性 | 第34-37页 |
| 2．1 SSR在真核生物基因组中的分布 | 第34页 |
| 2．2 SSR长度的多态性 | 第34-35页 |
| 2．3 SSR与基因表达 | 第35页 |
| 2．4 SSR多态性的生物学效应 | 第35页 |
| 2．5 SSR标记在作物育种上的应用 | 第35-37页 |
| 2．5．1 用于构建或整合遗传图谱 | 第35-36页 |
| 2．5．2 亲本的选配和遗传资源评价 | 第36页 |
| 2．5．3 农艺性状基因的定位与标记辅助选择 | 第36-37页 |
| 3． 应用分子标记定位基因的方法 | 第37-38页 |
| 4． 植物发育基因分离 | 第38-41页 |
| 4．1 植物发育基因分离的主要方法及其优缺点 | 第38-39页 |
| 4．2 图位克隆技术及其在植物基因克隆中的研究进展 | 第39-41页 |
| 4．2．1 图位克隆技术的主要过程 | 第39-40页 |
| 4．2．2 利用图位克隆技术分离的植物发育基因 | 第40-41页 |
| 第一部分 三个水稻生殖发育突变的发现及其形态学研究 | 第41-60页 |
| 1． 材料与方法 | 第42-44页 |
| 1．1 水稻花发育三个关键时期突变体的获得 | 第42页 |
| 1．2 三种突变体的保持 | 第42页 |
| 1．3 方法 | 第42-44页 |
| 1．3．1 石蜡切片 | 第42-43页 |
| 1．3．1．1 实验材料准备 | 第42-43页 |
| 1．3．1．2 石蜡切片方法 | 第43页 |
| 1．3．2 解剖镜观察 | 第43页 |
| 1．3．3 形态学观察 | 第43-44页 |
| 2． 实验结果 | 第44-57页 |
| 2．1 lhd的形态特征和显微特征 | 第44-50页 |
| 2．1．1 lhd的形态特征 | 第44页 |
| 2．1．2 lhd（t）对出叶速度和叶片大小的影响 | 第44-46页 |
| 2．1．3 lhd的解剖学特征 | 第46-50页 |
| 2．2 fzp的形态特征 | 第50-52页 |
| 2．2．1 fzp（t）对株叶形态和分蘖的影响 | 第50页 |
| 2．2．2 fzp（t）阻断水稻生殖发育的时期 | 第50页 |
| 2．2．3 fzp的显微特征 | 第50-52页 |
| 2．3 dro的形态特征 | 第52-57页 |
| 2．3．1 dro植株颖花的结构特征 | 第52页 |
| 2．3．2 dro的作用时期 | 第52页 |
| 2．3．3 dro颖花形成的显微特征 | 第52-57页 |
| 3． 讨论 | 第57-60页 |
| 3．1 LHD（T）、FZP（T）和DRO在水稻生殖发育中的重要地位 | 第57-58页 |
| 3．2 lhd与水稻其它花序发育突变体的比较 | 第58-59页 |
| 3．3 DRO在花器官分化和发育中的作用 | 第59页 |
| 3．4 对突变体进行形态学观察的意义 | 第59-60页 |
| 第二部分 三个水稻生殖发育关键基因的遗传分析 | 第60-74页 |
| 1． 材料与方法 | 第61-64页 |
| 1．1 遗传分析群体的建立 | 第61-63页 |
| 1．1．1 杂交亲本 | 第61页 |
| 1．1．2 分离群体构建 | 第61-63页 |
| 1．2 种植 | 第63页 |
| 1．3 调查与统计分析 | 第63-64页 |
| 2． 结果与分析 | 第64-72页 |
| 2．1 杂合体自交后代遗传分离 | 第64-65页 |
| 2．2 杂交后代的遗传分离 | 第65-68页 |
| 2．2．1 lhd杂交后代的遗传分离及环境的影响 | 第65-66页 |
| 2．2．2 fzp杂交后代的遗传分离及环境的影响 | 第66-67页 |
| 2．2．3 dro杂交后代的遗传分离及环境的影响 | 第67-68页 |
| 2．3 双突变基因的遗传互作行为 | 第68-72页 |
| 3． 讨论 | 第72-74页 |
| 3．1 水稻生殖发育关键基因的遗传互作 | 第72页 |
| 3．2 遗传背景对三个突变性状表现的影响 | 第72-74页 |
| 第三部分 三个水稻花发育关键基因的分子标记定位 | 第74-86页 |
| 1． 材料与方法 | 第75-79页 |
| 1．1 材料 | 第75-76页 |
| 1．1．1 杂交亲本 | 第75页 |
| 1．1．2 群体构建 | 第75-76页 |
| 1．1．3 引物来源 | 第76页 |
| 1．2 方法 | 第76-79页 |
| 1．2．1 BSA基因池构建 | 第76页 |
| 1．2．2 DNA的提取 | 第76页 |
| 1．2．3 PCR反应 | 第76-77页 |
| 1．2．4 银染 | 第77-79页 |
| 1．2．4．1 制胶 | 第77页 |
| 1．2．4．2 电泳 | 第77-78页 |
| 1．2．4．3 银染 | 第78-79页 |
| 2． 结果分析 | 第79-83页 |
| 2．1 lhd（t）的微卫星分析 | 第79-80页 |
| 2．2 fzp（t）的微卫星分析 | 第80-82页 |
| 2．3 dro的微卫星分析 | 第82-83页 |
| 3． 讨论 | 第83-86页 |
| 3．1 采用SSR标记定位基因的效率 | 第83页 |
| 3．2 关于植物生殖发育关键基因定位群体的构建 | 第83-84页 |
| 3．3 对水稻花发育深入研究的意义 | 第84页 |
| 3．4 对水稻花发育进一步研究的方向 | 第84-86页 |
| 参考文献 | 第86-98页 |
| 附录 | 第98-100页 |
| 致谢 | 第100页 |
