中文摘要 | 第1-10页 |
英文摘要 | 第10-12页 |
缩略词表 | 第12-13页 |
第一章 文献综述 | 第13-25页 |
引言 | 第13-14页 |
1 高羊茅离体再生体系研究进展 | 第14-18页 |
·基因型的选择 | 第14-15页 |
·基本培养基的选择 | 第15页 |
·外植体的选择 | 第15页 |
·外植体的预处理及消毒方法 | 第15-16页 |
·激素的配比 | 第16-18页 |
·愈伤组织的诱导 | 第16-17页 |
·愈伤组织的继代 | 第17页 |
·愈伤组织的分化和幼苗生根 | 第17-18页 |
·其它因素对植株再生的影响 | 第18页 |
2 高羊茅的遗传转化研究进展 | 第18-21页 |
·遗传转化方法 | 第18-19页 |
·转化受体 | 第19页 |
·转入的基因 | 第19-20页 |
·筛选方法 | 第20-21页 |
·外源基因整合与表达的复杂性 | 第21页 |
3 高羊茅离体培养和遗传转化中存在的问题与展望 | 第21-23页 |
·高羊茅离体培养中存在的问题与展望 | 第21-22页 |
·高羊茅遗传转化中存在的问题与展望 | 第22-23页 |
本研究的背景、目的及意义 | 第23-25页 |
第二章 高羊茅愈伤组织再生体系的优化 | 第25-43页 |
引言 | 第25页 |
1 材料与方法 | 第25-27页 |
·试验材料 | 第25页 |
·试验方法 | 第25-27页 |
·种子的消毒方法 | 第25-26页 |
·外植体的选择与接种 | 第26页 |
·愈伤组织诱导和继代培养 | 第26页 |
·愈伤组织分化培养 | 第26页 |
·再生苗生根培养和移栽 | 第26页 |
·培养基 | 第26-27页 |
·数据处理 | 第27页 |
2 结果与分析 | 第27-39页 |
·种子消毒方法的选择 | 第27页 |
·愈伤组织的诱导 | 第27-33页 |
·不同外植体对愈伤组织诱导的影响 | 第27-30页 |
·种子去除胚乳或去除种皮对愈伤组织诱导的影响 | 第28页 |
·胚轴、幼根和幼叶愈伤组织诱导的比较 | 第28-30页 |
·不同基本培养基对愈伤组织诱导的影响 | 第30页 |
·外源激素和水解酪蛋白对愈伤组织诱导的影响 | 第30-33页 |
·不同2,4-D浓度对出芽率及出愈率的影响 | 第30-32页 |
·KT、ABA和水解酪蛋白的添加对愈伤组织诱导的影响 | 第32-33页 |
·愈伤组织的继代培养 | 第33-36页 |
·不同诱导培养基来源的愈伤组织在继代中的差异 | 第34-35页 |
·不同激素组合对愈伤组织胚性发生和保持的影响 | 第35-36页 |
·愈伤组织的分化培养 | 第36-39页 |
·6-BA与KT对愈伤组织分化的影响 | 第36-37页 |
·不同基本培养基对愈伤组织分化的影响 | 第37-38页 |
·不同外植体对愈伤组织分化的影响 | 第38-39页 |
·再生苗生根和移栽 | 第39页 |
3 讨论 | 第39-43页 |
·影响愈伤组织植株再生的因素 | 第39-42页 |
·正交设计用于植物组织培养研究的可行性 | 第42页 |
·两种种子愈伤组织诱导率统计方法的比较 | 第42-43页 |
第三章 根癌农杆菌介导溶菌酶基因转化高羊茅的研究 | 第43-55页 |
引言 | 第43页 |
1 材料与方法 | 第43-48页 |
·试验材料 | 第43-44页 |
·植物材料 | 第43页 |
·质粒与基因 | 第43页 |
·PCR引物 | 第43-44页 |
·分子生物学试剂 | 第44页 |
·农杆菌转化用培养基 | 第44页 |
·试验方法 | 第44-48页 |
·质粒DNA的小量提取 | 第44-45页 |
·质粒转化农杆菌 | 第45页 |
·农杆菌转化高羊茅愈伤组织 | 第45-46页 |
·植物总DNA的小量提取 | 第46-47页 |
·转化植株的PCR分析 | 第47-48页 |
·转化植株的NPTII-PCR分析 | 第47页 |
·转化植株的溶菌酶基因-PCR分析 | 第47-48页 |
2 结果与分析 | 第48-51页 |
·抗生素筛选浓度的确定 | 第48-49页 |
·愈伤组织状态对转化再生效率的影响 | 第49-50页 |
·高羊茅农杆菌转化体系的建立 | 第50-51页 |
·拟转化植株的获得 | 第51页 |
·转化植株的PCR检测 | 第51页 |
3 讨论 | 第51-55页 |
·影响农杆菌转化效率的因素 | 第51-53页 |
·关于转基因草坪草的生物安全性问题 | 第53-55页 |
参考文献 | 第55-62页 |
图版 | 第62-66页 |
致谢 | 第66-67页 |
作者简介 | 第67页 |