引言 | 第1-18页 |
第一章 小麦苗期水分利用效率生理差异 | 第18-31页 |
1 材料与方法 | 第18-20页 |
·材料 | 第18页 |
·材料培养 | 第18页 |
·材料处理 | 第18页 |
·方法 | 第18-20页 |
·光合和蒸腾速率测定 | 第18页 |
·渗透势测定 | 第18页 |
·单株水分利用效率测定 | 第18-19页 |
·叶片和根系干重测定 | 第19页 |
·叶片离体失水速率测定 | 第19-20页 |
2 结果与分析 | 第20-27页 |
·水旱地小麦地上和地下部生长特性 | 第20-21页 |
·渗透胁迫对渗透胁迫对水旱地小麦叶片和根系含水量的影响 | 第21页 |
·渗透胁迫对水旱地小麦离体失水速率的影响 | 第21-22页 |
·渗透胁迫对水旱地小麦根冠比的影响 | 第22-23页 |
·渗透胁迫对水旱地小麦叶片和根系渗透势的影响 | 第23-24页 |
·渗透胁迫对水旱地小麦叶片光合和蒸腾速率以及气孔导度的影响 | 第24-25页 |
·渗透胁迫对水旱地小麦叶片水分利用效率的影响 | 第25-26页 |
·渗透胁迫对水旱地小麦单株水分利用效率的影响 | 第26-27页 |
3 讨论 | 第27-30页 |
·不同水旱类型小麦水分利用效率比较 | 第27页 |
·水分利用效率主要影响因子 | 第27-28页 |
·不同水分利用效率品种的抗旱性差异 | 第28-30页 |
4 结论 | 第30-31页 |
第二章 小麦苗期水分利用效率相关基因分离与克隆 | 第31-75页 |
1 材料与方法 | 第31-42页 |
·材料 | 第31页 |
·材料培养 | 第31页 |
·材料处理 | 第31页 |
·试剂与引物 | 第31页 |
·仪器设施 | 第31页 |
·方法 | 第31-42页 |
·叶片RNA总量提取及检测结果 | 第31-32页 |
·mRNA标准纯化 | 第32页 |
·cDNA合成 | 第32-33页 |
·AFLP技术体系 | 第33-35页 |
·聚丙烯酰胺凝胶电泳技术 | 第35-36页 |
·差异表达片段回收及二次扩增 | 第36页 |
·扩增产物的琼脂糖电泳检测 | 第36-37页 |
·感受态大肠杆菌细胞的制备 | 第37页 |
·PCR产物与质粒载体的连接 | 第37页 |
·转化大肠杆菌 | 第37页 |
·质粒DNA提取 | 第37-38页 |
·插入片段酶切检测 | 第38页 |
·Northern杂交 | 第38-39页 |
·基因片段测序与序列分析 | 第39-40页 |
·RT-PCR技术 | 第40页 |
·PCR产物的克隆及DNA序列分析 | 第40-41页 |
·RACE-PCR技术 | 第41-42页 |
2 结果与分析 | 第42-72页 |
·小麦叶片RNA的提取及纯化结果 | 第42-44页 |
·cDNA合成 | 第44-46页 |
·小麦AFLP差异显示 | 第46-48页 |
·引物筛选 | 第48-54页 |
·二次扩增结果 | 第54-55页 |
·Northern检测结果 | 第55-56页 |
·序列测定及分析 | 第56-69页 |
·基因片段在根系中表达结果 | 第69页 |
·基因片段注册 | 第69-70页 |
·基因全长分析 | 第70-72页 |
3 讨论 | 第72-74页 |
4 结论 | 第74-75页 |
参考文献 | 第75-84页 |
个人简历 | 第84-85页 |
致谢 | 第85页 |