| 中文摘要 | 第1-12页 |
| 英文摘要 | 第12-18页 |
| 本课题创新点 | 第18-19页 |
| 前言 | 第19-20页 |
| 第一部分 大鼠肝微粒体MGST1的纯化及家兔抗MGST1多克隆抗体的制备 | 第20-36页 |
| 实验一 大鼠肝微粒体MGST1的层析纯化与酶催化动力学及激活特性研究 | 第20-27页 |
| 实验目的 | 第20-21页 |
| 实验材料 | 第21-22页 |
| 实验方法 | 第22-24页 |
| 实验结果 | 第24-27页 |
| 实验二 家兔抗大鼠MGST1多克隆抗体的制备及其初步应用 | 第27-35页 |
| 实验目的 | 第27-28页 |
| 实验材料 | 第28页 |
| 实验方法 | 第28-30页 |
| 实验结果 | 第30-33页 |
| 讨论 | 第33-35页 |
| 第一部分结论 | 第35-36页 |
| 第二部分 NO供体或诱生型NO对大鼠MGST1及相关巯基蛋白的S-亚硝酰化修饰 | 第36-64页 |
| 引言 | 第36-37页 |
| 实验一 建立Biotin Switch法检测纯化的MGST1的体外S-亚硝酰化修饰 | 第37-41页 |
| 实验目的 | 第37页 |
| 实验材料 | 第37-38页 |
| 实验方法 | 第38-40页 |
| 实验结果 | 第40-41页 |
| 实验二 Biotin Switch法检测微粒体蛋白中MGST1是否存在S-亚硝酰化修饰方式 | 第41-43页 |
| 实验目的 | 第41页 |
| 实验材料 | 第41-42页 |
| 实验方法 | 第42页 |
| 实验结果 | 第42-43页 |
| 实验三 Biotin Switch法检测脂多糖诱导大鼠肝损伤模型中MGST1及相关巯基蛋白的S-亚硝酰化修饰 | 第43-49页 |
| 实验目的 | 第43页 |
| 实验材料 | 第43-44页 |
| 实验方法 | 第44-45页 |
| 实验结果 | 第45-49页 |
| 实验四 蛋白组学技术鉴定脂多糖诱导肝微粒体中的S-亚硝酰化修饰蛋白 | 第49-58页 |
| 实验目的 | 第49页 |
| 实验材料 | 第49页 |
| 实验方法 | 第49页 |
| 实验结果 | 第49-53页 |
| 讨论 | 第53-58页 |
| 实验五 醛缩酶的S-亚硝酰化修饰及功能调控 | 第58-63页 |
| 实验目的 | 第58页 |
| 实验材料 | 第58页 |
| 实验方法 | 第58-59页 |
| 实验结果 | 第59-62页 |
| 讨论 | 第62-63页 |
| 第二部分结论 | 第63-64页 |
| 第三部分 MGST1在对乙酰氨基酚导致小鼠肝损伤模型中的修饰激活机制 | 第64-91页 |
| 引言 | 第64-65页 |
| 实验一 制备家兔抗N-乙酰-p-苯醌亚胺结合蛋白的多克隆抗体 | 第65-71页 |
| 实验目的 | 第65页 |
| 实验材料 | 第65-66页 |
| 实验方法 | 第66-69页 |
| 实验结果 | 第69-71页 |
| 实验二 检测对乙酰氨基酚肝损伤模型中MGST1与NAPQI结合的情况 | 第71-78页 |
| 实验目的 | 第71-72页 |
| 实验材料 | 第72页 |
| 实验方法 | 第72-73页 |
| 实验结果 | 第73-78页 |
| 实验三 检测对乙酰氨基酚肝损伤模型中MGST1是否存在硝基化修饰方式 | 第78-81页 |
| 实验目的 | 第78页 |
| 实验材料 | 第78页 |
| 实验方法 | 第78-80页 |
| 实验结果 | 第80-81页 |
| 实验四 对乙酰氨基酚肝损伤模型中MGST1的二聚体修饰方式 | 第81-90页 |
| 实验目的 | 第81页 |
| 实验材料 | 第81页 |
| 实验方法 | 第81-82页 |
| 实验结果 | 第82-85页 |
| 讨论 | 第85-90页 |
| 第三部分结论 | 第90-91页 |
| 参考文献 | 第91-100页 |
| 综述：活性氮对肝脏微粒体GST1的修饰激活研究进展 | 第100-121页 |
| 在读期间发表相关文章 | 第121-122页 |
| 致谢 | 第122页 |
