| 第一章 绪论 | 第1-33页 |
| 1．1 背景 | 第11-14页 |
| 1．2 软组织增强材料 | 第14-22页 |
| 1．2．1 软组织增强策略和应用 | 第14-17页 |
| 1．2．2 软组织增强对材料的要求 | 第17页 |
| 1．2．3 软组织增强材料的研究现状 | 第17-20页 |
| 1．2．4 软组织增强材料的组织工程化趋势 | 第20-22页 |
| 1．3 海藻酸钙凝胶微球作为软组织增强材料的潜力 | 第22-27页 |
| 1．3．1 海藻酸钠及海藻酸钙凝胶 | 第22-24页 |
| 1．3．2 海藻酸钙凝胶微球的制备方法 | 第24-25页 |
| 1．3．3 海藻酸钙凝胶微球的应用 | 第25页 |
| 1．3．4 海藻酸钙凝胶微球作为软组织增强材料的潜力 | 第25-27页 |
| 1．4 工作思路 | 第27-28页 |
| 参考文献 | 第28-33页 |
| 第二章 CAMs软组织增强材料的制备与体外相关性能研究 | 第33-53页 |
| 2．1 引言 | 第33-34页 |
| 2．2 实验材料和方法 | 第34-40页 |
| 2．2．1 实验材料 | 第34页 |
| 2．2．2 实验仪器 | 第34页 |
| 2．2．3 实验方法 | 第34-40页 |
| 2．2．3．1 海藻酸钙凝胶微球的制备 | 第34-36页 |
| 2．2．3．2 微球的壳聚糖修饰 | 第36-38页 |
| 2．2．3．3 微球的形态观察 | 第38页 |
| 2．2．3．4 微球粒径及其分布的测定 | 第38页 |
| 2．2．3．5 CAMs软组织增强材料的制备 | 第38页 |
| 2．2．3．6 CAMs软组织增强材料流变性能的考察方法 | 第38-39页 |
| 2．2．3．7 CAMs软组织增强材料注射性能的考察方法 | 第39页 |
| 2．2．3．8 实验组和对照组 | 第39页 |
| 2．2．3．9 海藻酸钙凝胶微球的冻干恢复实验 | 第39-40页 |
| 2．3 结果与讨论 | 第40-50页 |
| 2．3．1 海藻酸钙凝胶微球制备的结果与分析 | 第40-41页 |
| 2．3．1．1 微球的形态 | 第40-41页 |
| 2．3．1．2 微球的粒径及其分布 | 第41页 |
| 2．3．2 CAMs软组织增强材料流变性能的分析与评价 | 第41-43页 |
| 2．3．2．1 组分配比 | 第41-42页 |
| 2．3．2．2 微球粒径 | 第42页 |
| 2．3．2．3 微球的壳聚糖修饰 | 第42-43页 |
| 2．3．3 CAMs软组织增强材料注射性能的分析与评价 | 第43-45页 |
| 2．3．3．1 组分配比 | 第43-45页 |
| 2．3．3．2 微球粒径 | 第45页 |
| 2．3．3．3 微球的壳聚糖修饰 | 第45页 |
| 2．3．4 CAMs软组织增强材料最佳组分配比及微球外部凝胶作用的分析 | 第45-46页 |
| 2．3．4．1 最佳组分配比 | 第45-46页 |
| 2．3．4．2 微球外部凝胶的作用 | 第46页 |
| 2．3．5 海藻酸钙凝胶微球冻干恢复性能的分析与评价 | 第46-50页 |
| 2．3．5．1 冷冻干燥后微球的形态 | 第46-47页 |
| 2．3．5．2 冻干微球在生理盐水中的形态恢复 | 第47-48页 |
| 2．3．5．3 冻干微球在氯化钙溶液中的形态恢复 | 第48-50页 |
| 2．4 小结 | 第50-51页 |
| 参考文献 | 第51-53页 |
| 第三章 CAMs软组织增强材料体内吸收性能和机理研究 | 第53-70页 |
| 3．1 引言 | 第53页 |
| 3．2 实验材料和方法 | 第53-59页 |
| 3．2．1 实验材料 | 第53-54页 |
| 3．2．2 实验仪器 | 第54页 |
| 3．2．3 实验方法 | 第54-59页 |
| 3．2．3．1 海藻酸钠的纯化 | 第54-55页 |
| 3．2．3．2 体内吸收性能研究的动物模型 | 第55-56页 |
| 3．2．3．3 实验组与对照组 | 第56-57页 |
| 3．2．3．4 材料的注射移植方法 | 第57页 |
| 3．2．3．5 统计学分析方法 | 第57-58页 |
| 3．2．3．6 微球体外溶胀实验 | 第58页 |
| 3．2．3．7 微球内外离子渗透扩散实验 | 第58-59页 |
| 3．3 结果与讨论 | 第59-68页 |
| 3．3．1 影响CAMs软组织增强材料体内吸收性能的因素 | 第59-62页 |
| 3．3．1．1 微球粒径 | 第59-60页 |
| 3．3．1．2 海藻酸钠纯化 | 第60-61页 |
| 3．3．1．3 微球的壳聚糖修饰 | 第61-62页 |
| 3．3．2 CAMs软组织增强材料的体内吸收机理分析 | 第62-68页 |
| 3．3．2．1 微球的主导作用 | 第62页 |
| 3．3．2．2 材料在体内的吸收机理 | 第62-63页 |
| 3．3．2．3 微球粒径影响材料体内吸收性的实质 | 第63-68页 |
| 3．4 小结 | 第68页 |
| 参考文献 | 第68-70页 |
| 第四章 CAMs软组织增强材料组织相容性研究 | 第70-86页 |
| 4．1 引言 | 第70页 |
| 4．2 实验材料和方法 | 第70-72页 |
| 4．2．1 实验材料 | 第70-71页 |
| 4．2．2 实验仪器 | 第71页 |
| 4．2．3 实验方法 | 第71-72页 |
| 4．2．3．1 移植部位的解剖和组织的获取 | 第71页 |
| 4．2．3．2 微球的回收 | 第71页 |
| 4．2．3．3 组织切片的制作 | 第71-72页 |
| 4．2．3．4 苏木素-伊红(HE)染色 | 第72页 |
| 4．2．3．5 实验组与对照组 | 第72页 |
| 4．2．3．6 统计学分析方法 | 第72页 |
| 4．3 结果与讨论 | 第72-84页 |
| 4．3．1 小鼠生存状态考察 | 第72-73页 |
| 4．3．2 植入材料在体内的主要组织反应 | 第73-75页 |
| 4．3．3 局部解剖的组织形态 | 第75-76页 |
| 4．3．4 体内回收微球的形态 | 第76-77页 |
| 4．3．5 组织学分析 | 第77-84页 |
| 4．3．5．1 CAMs500组 | 第77-78页 |
| 4．3．5．2 CCAMs500组 | 第78页 |
| 4．3．5．3 Gel组 | 第78-83页 |
| 4．3．5．4 植入材料外部纤维包囊情况 | 第83页 |
| 4．3．5．5 评价 | 第83-84页 |
| 4．4 小结 | 第84-85页 |
| 参考文献 | 第85-86页 |
| 第五章 组织工程化CAMs软组织增强材料研究初探 | 第86-103页 |
| 5．1 引言 | 第86页 |
| 5．2 实验材料和方法 | 第86-89页 |
| 5．2．1 实验材料 | 第86-87页 |
| 5．2．2 实验仪器 | 第87页 |
| 5．2．3 实验方法 | 第87-89页 |
| 5．2．3．1 小鼠成纤维细胞L929的培养 | 第87页 |
| 5．2．3．2 细胞与材料的混合 | 第87-88页 |
| 5．2．3．3 实验组与对照组 | 第88-89页 |
| 5．2．3．4 材料的注射移植方法 | 第89页 |
| 5．2．3．5 体内吸收性能考察方法 | 第89页 |
| 5．2．3．6 组织学分析方法 | 第89页 |
| 5．2．3．7 统计学分析方法 | 第89页 |
| 5．3 结果与讨论 | 第89-102页 |
| 5．3．1 小鼠成纤维细胞L929的特点和形态 | 第89-91页 |
| 5．3．1．1 L929的特点 | 第89-90页 |
| 5．3．1．2 1640培养液中L929的形态 | 第90页 |
| 5．3．1．3 L929/海藻酸钠混合溶液中的L929的形态 | 第90-91页 |
| 5．3．2 体内吸收性能考察 | 第91-97页 |
| 5．3．2．1 CAMs/cell组和CAMs组对比 | 第91-92页 |
| 5．3．2．2 CCAMs/cell组和CCAMs组对比 | 第92-93页 |
| 5．3．2．3 Gel-1640/cell组和Gel组对比 | 第93-94页 |
| 5．3．2．4 1640培养液对海藻酸钙凝胶体内吸收性的影响 | 第94-95页 |
| 5．3．2．5 各注射组总体对比分析 | 第95-97页 |
| 5．3．3 移植后组织学分析 | 第97-101页 |
| 5．3．3．1 CAMs/cell组 | 第97页 |
| 5．3．3．2 CCAMs/cell组 | 第97-101页 |
| 5．3．3．3 Gel-1640/cell组 | 第101页 |
| 5．3．4 细胞与材料的相互作用 | 第101-102页 |
| 5．3．4．1 壳聚糖修饰的作用 | 第101页 |
| 5．3．4．2 细胞对凝胶的增强作用 | 第101-102页 |
| 5．4 小结 | 第102页 |
| 参考文献 | 第102-103页 |
| 第六章 总结 | 第103-107页 |
| 6．1 结论 | 第103-104页 |
| 6．2 不足及后续工作建议 | 第104-107页 |
| 作者简介及发表文章 | 第107-108页 |
| 致谢 | 第108页 |
