| 中文摘要 | 第1-8页 |
| 英文摘要 | 第8-6页 |
| 缩略语 | 第6-10页 |
| 前言 | 第10-11页 |
| 1 文献综述 | 第11-33页 |
| 1．1 植物细胞中膜H+ATPase | 第11-14页 |
| 1．2 H+ATPase的结构、组成、性质 | 第14-28页 |
| 1．3 胡杨耐盐机理及V-ATPase的关系 | 第28-33页 |
| 2 材料与方法 | 第33-40页 |
| 2．1 胡杨细胞悬浮培养体系的建立 | 第34页 |
| 2．2 胡杨液泡膜微囊的制备 | 第34-35页 |
| 2．3 定磷法测定H+ATPase的水解活性 | 第35-36页 |
| 2．4 胡杨液泡膜上H+ATPase的质子泵活性的测定 | 第36页 |
| 2．5 液泡膜焦磷酸酶质子转运活性的测定 | 第36页 |
| 2．6 蛋白质测定及SDS-PAGE | 第36-37页 |
| 2．7 免疫杂交 | 第37-38页 |
| 2．8 脂质体的制备 | 第38页 |
| 2．9 增溶实验 | 第38页 |
| 2．10 液泡膜微囊的分步抽提纯化 | 第38-39页 |
| 2．11 蔗糖密度梯度离心法纯化蛋白 | 第39页 |
| 2．12 活性胶（Nativegel）电泳 | 第39-40页 |
| 3 结果与分析 | 第40-61页 |
| 3．1 悬浮细胞的培养 | 第40-42页 |
| 3．2 液泡微囊的纯化 | 第42-45页 |
| 3．3 盐胁迫对胡杨V-ATPase的水解活性和质子转运活性的影响 | 第45-53页 |
| 3．4 Western-blotting | 第53-54页 |
| 3．5 胡杨液泡膜焦磷酸酶质子转运活性 | 第54页 |
| 3．6 盐胁迫下液泡膜ATPase和PPiase活性变化 | 第54-55页 |
| 3．7 OG与TritonX-100的增溶效果 | 第55-56页 |
| 3．8 Q2琼脂糖层析柱的图谱 | 第56-57页 |
| 3．9 蔗糖梯度离心部分纯化的V-ATPase | 第57-59页 |
| 3．10 活性胶 | 第59-61页 |
| 4 讨论 | 第61-67页 |
| 4．1 胡杨悬浮细胞的培养 | 第61页 |
| 4．2 胡杨液泡膜的制备 | 第61-62页 |
| 4．3 Mg2+启动与ATP启动H+ATPase的不同 | 第62-63页 |
| 4．4 Cl-对水解活性、质子泵的激活作用 | 第63页 |
| 4．5 BafilomycinA1对水解活性的影响 | 第63-64页 |
| 4．6 SO32-和抑制剂DCCD，bafilomycinA1的相互作用 | 第64页 |
| 4．7 液泡膜ATPase活性对MgATP依赖的冷失活 | 第64页 |
| 4．8 盐胁迫对V-ATPase蛋白含量的影响 | 第64-65页 |
| 4．9 盐胁迫下液泡膜ATPase和PPiase活性变化 | 第65-66页 |
| 4．10 增溶条件的选择 | 第66-74页 |
| 4．11 不同方法纯化V-ATPase的比较 | 第74-67页 |
| 5 结论 | 第67-69页 |
| 参考文献 | 第69-74页 |
