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自体静脉移植平滑肌细胞增殖及内膜增生的实验研究

中文摘要第1-14页
英文摘要第14-17页
缩写词第17-18页
引言第18-20页
文献回顾第20-44页
 一、移植血管内膜增生演变规律及相关因素研究第20-26页
  1.内膜增生病理第20-22页
  2.内膜增生的影响因素第22-26页
   ·血流动力学第22-25页
   ·血液中有形成分的影响第25-26页
     ·血小板第25页
     ·白细胞第25-26页
 二、移植血管内膜增生的临床研究及药物防治第26-32页
  1.临床研究概况第27-28页
  2.内膜增生药物防治第28-32页
   ·抗血小板粘附、聚集和释放类药第28-30页
   ·影响化学介质作用途径的药物第30页
   ·作用于白细胞药物第30-31页
   ·作用于SMC的药物第31-32页
 三、血管内支架(Stent)研究概况第32-33页
  1.Stent目前应用范围第32-33页
  2.Stent的优点第33页
  3.Stent的缺点第33页
 四、SMC增殖定量检测方法第33-36页
  1.增生内膜相对厚度、相对面积和管腔狭窄度分析第34-35页
  2.PCNA免疫组化分析第35页
  3.FCM技术第35-36页
 五、内皮素(ET)及内皮素受体(ET—R)的分子生物学特性第36-44页
  1.ET的分子生物学特性第36-39页
   ·ET—1第36-38页
   ·ET—2和ET—3第38-39页
  2.ET—R的分子生物学特性第39-44页
   ·ETA与ETB的异质性第39-40页
   ·ET—R的分子克隆研究与ET—R表达和调节第40-44页
实验一 内皮素Ⅰ受体基因探针(Endothelin A receptor cDNA,ETA—cDNA)制备第44-49页
 一、ETA质粒提取(碱裂解法)第45-47页
 二、Dig—Ⅱ—dUTP标记探针第47-49页
实验二 自体移植静脉术后白细胞与内膜增生的量效关系第49-60页
 中文摘要第49-50页
 英文摘要第50-51页
 材料与方法第51-55页
  一、动物分组第51页
  二、手术及取材方法第51-52页
  三、移植血管增生内膜白细胞免疫组织化学第52-54页
  四、微机图像分析第54-55页
  五、统计学方法第55页
 结果第55-56页
 讨论第56-60页
实验三 自体移植静脉内膜增生与内皮细胞vWF抗原表达第60-68页
 中文摘要第60-61页
 英文摘要第61-62页
 材料与方法第62-63页
  一、动物分组及手术模型第62-63页
  二、vWF免疫组织化学第63页
  三、阳性细胞指数的真彩扫描仪微机图像分析第63页
 结果第63-64页
 讨论第64-68页
实验四 自体移植静脉增生内膜内皮素Ⅰ受体基因(ETAcDNA)表达及其意义第68-77页
 中文摘要第68-69页
 英文摘要第69-71页
 材料与方法第71-73页
  一、试剂第71页
  二、动物分组及手术模型建立第71页
  三、探针制备及原位分子杂交第71-72页
   1.探针制备第72页
   2.原位杂交第72页
  四、微机图像分析第72-73页
 结果第73-75页
  一、ETAcDNA表达情况及表达密度第73页
  二、内膜相对厚度第73-74页
  三、表达密度与IH相对厚度相关分析第74-75页
 讨论第75-77页
实验五 含β射线的软性血管外模型(SEM)对移植血管内膜增生和平滑肌细胞增殖的抑制作用第77-88页
 中文摘要第77-78页
 英文摘要第78-79页
 材料与方法第79-81页
  一、动物与分组第79页
  二、SEM的制备第79-80页
  三、手术模型及给药方法第80页
  四、ETAcDNA表达密度(ED)与微机图像分析第80-81页
   1.ED的测量第80-81页
   2.内膜相对厚度的测量第81页
 结果第81-84页
 讨论第84-88页
结论第88-90页
致谢第90-91页
参考文献第91-103页
撰写论文及发表情况第103-105页
照片第105-113页

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