中文摘要 | 第1-14页 |
英文摘要 | 第14-17页 |
缩写词 | 第17-18页 |
引言 | 第18-20页 |
文献回顾 | 第20-44页 |
一、移植血管内膜增生演变规律及相关因素研究 | 第20-26页 |
1.内膜增生病理 | 第20-22页 |
2.内膜增生的影响因素 | 第22-26页 |
·血流动力学 | 第22-25页 |
·血液中有形成分的影响 | 第25-26页 |
·血小板 | 第25页 |
·白细胞 | 第25-26页 |
二、移植血管内膜增生的临床研究及药物防治 | 第26-32页 |
1.临床研究概况 | 第27-28页 |
2.内膜增生药物防治 | 第28-32页 |
·抗血小板粘附、聚集和释放类药 | 第28-30页 |
·影响化学介质作用途径的药物 | 第30页 |
·作用于白细胞药物 | 第30-31页 |
·作用于SMC的药物 | 第31-32页 |
三、血管内支架(Stent)研究概况 | 第32-33页 |
1.Stent目前应用范围 | 第32-33页 |
2.Stent的优点 | 第33页 |
3.Stent的缺点 | 第33页 |
四、SMC增殖定量检测方法 | 第33-36页 |
1.增生内膜相对厚度、相对面积和管腔狭窄度分析 | 第34-35页 |
2.PCNA免疫组化分析 | 第35页 |
3.FCM技术 | 第35-36页 |
五、内皮素(ET)及内皮素受体(ET—R)的分子生物学特性 | 第36-44页 |
1.ET的分子生物学特性 | 第36-39页 |
·ET—1 | 第36-38页 |
·ET—2和ET—3 | 第38-39页 |
2.ET—R的分子生物学特性 | 第39-44页 |
·ETA与ETB的异质性 | 第39-40页 |
·ET—R的分子克隆研究与ET—R表达和调节 | 第40-44页 |
实验一 内皮素Ⅰ受体基因探针(Endothelin A receptor cDNA,ETA—cDNA)制备 | 第44-49页 |
一、ETA质粒提取(碱裂解法) | 第45-47页 |
二、Dig—Ⅱ—dUTP标记探针 | 第47-49页 |
实验二 自体移植静脉术后白细胞与内膜增生的量效关系 | 第49-60页 |
中文摘要 | 第49-50页 |
英文摘要 | 第50-51页 |
材料与方法 | 第51-55页 |
一、动物分组 | 第51页 |
二、手术及取材方法 | 第51-52页 |
三、移植血管增生内膜白细胞免疫组织化学 | 第52-54页 |
四、微机图像分析 | 第54-55页 |
五、统计学方法 | 第55页 |
结果 | 第55-56页 |
讨论 | 第56-60页 |
实验三 自体移植静脉内膜增生与内皮细胞vWF抗原表达 | 第60-68页 |
中文摘要 | 第60-61页 |
英文摘要 | 第61-62页 |
材料与方法 | 第62-63页 |
一、动物分组及手术模型 | 第62-63页 |
二、vWF免疫组织化学 | 第63页 |
三、阳性细胞指数的真彩扫描仪微机图像分析 | 第63页 |
结果 | 第63-64页 |
讨论 | 第64-68页 |
实验四 自体移植静脉增生内膜内皮素Ⅰ受体基因(ETAcDNA)表达及其意义 | 第68-77页 |
中文摘要 | 第68-69页 |
英文摘要 | 第69-71页 |
材料与方法 | 第71-73页 |
一、试剂 | 第71页 |
二、动物分组及手术模型建立 | 第71页 |
三、探针制备及原位分子杂交 | 第71-72页 |
1.探针制备 | 第72页 |
2.原位杂交 | 第72页 |
四、微机图像分析 | 第72-73页 |
结果 | 第73-75页 |
一、ETAcDNA表达情况及表达密度 | 第73页 |
二、内膜相对厚度 | 第73-74页 |
三、表达密度与IH相对厚度相关分析 | 第74-75页 |
讨论 | 第75-77页 |
实验五 含β射线的软性血管外模型(SEM)对移植血管内膜增生和平滑肌细胞增殖的抑制作用 | 第77-88页 |
中文摘要 | 第77-78页 |
英文摘要 | 第78-79页 |
材料与方法 | 第79-81页 |
一、动物与分组 | 第79页 |
二、SEM的制备 | 第79-80页 |
三、手术模型及给药方法 | 第80页 |
四、ETAcDNA表达密度(ED)与微机图像分析 | 第80-81页 |
1.ED的测量 | 第80-81页 |
2.内膜相对厚度的测量 | 第81页 |
结果 | 第81-84页 |
讨论 | 第84-88页 |
结论 | 第88-90页 |
致谢 | 第90-91页 |
参考文献 | 第91-103页 |
撰写论文及发表情况 | 第103-105页 |
照片 | 第105-113页 |