| 中文摘要 | 第1-10页 |
| 英文摘要 | 第10-13页 |
| 第一章 龙胆苦苷衍生物合成 | 第13-24页 |
| 研究内容 | 第13页 |
| 研究背景 | 第13-15页 |
| 实验研究 | 第15-22页 |
| 1.实验材料 | 第15页 |
| ·试剂 | 第15页 |
| ·仪器 | 第15页 |
| 2.实验方法和结果 | 第15-20页 |
| ·龙胆苦苷的提取 | 第15-16页 |
| ·龙胆苦苷加氢反应 | 第16-17页 |
| ·以Ranney Ni为催化剂 | 第16-17页 |
| ·以钯碳为催化剂 | 第17页 |
| ·采用酶作为催化剂的苷键水解反应 | 第17-19页 |
| ·苦杏仁酶催化的苷键水解反应 | 第17-18页 |
| ·β-葡萄糖苷酶催化的龙胆苦苷水解反应 | 第18页 |
| ·黑曲霉催化的龙胆苦苷水解反应 | 第18-19页 |
| ·转化为生物碱 | 第19页 |
| ·糖的乙酰化 | 第19-20页 |
| 3.讨论 | 第20-22页 |
| ·龙胆苦苷的提取 | 第20页 |
| ·龙胆苦苷加氢反应 | 第20-21页 |
| ·采用酶作为催化剂的苷键水解反应 | 第21页 |
| ·转化为生物碱 | 第21页 |
| ·糖的乙酰化 | 第21-22页 |
| 参考文献 | 第22-24页 |
| 第二章 龙胆苦苷镇痛抗炎药理作用研究 | 第24-44页 |
| 研究内容 | 第24页 |
| 研究背景 | 第24-26页 |
| 实验研究 | 第26-40页 |
| 1 实验材料 | 第26-27页 |
| ·实验动物 | 第26页 |
| ·药物及试剂 | 第26-27页 |
| ·实验仪器 | 第27页 |
| 2.实验方法和结果 | 第27-36页 |
| ·镇痛药效学实验研究 | 第27-31页 |
| ·扭体法 | 第27-29页 |
| ·热板法 | 第29-30页 |
| ·热辐射甩尾实验 | 第30页 |
| ·机械缩爪阈值测定 | 第30-31页 |
| ·抗炎药效学实验研究 | 第31-34页 |
| ·对二甲苯所致小鼠耳廓肿胀的影响 | 第31-32页 |
| ·对蛋清致大鼠足跖肿胀性炎症的保护作用 | 第32-33页 |
| ·对棉球诱导的大鼠肉芽组织增生的影响 | 第33-34页 |
| ·抗炎机理实验研究 | 第34-36页 |
| ·对去肾上腺二甲苯所致小鼠耳廓炎症反应的影响 | 第34-35页 |
| ·大鼠佐剂性关节炎(AA)的IL-1β、TNF-α含量测定 | 第35-36页 |
| 3.讨论 | 第36-40页 |
| 参考文献 | 第40-44页 |
| 第三章 镇痛机理研究 | 第44-86页 |
| 一 神经电生理 | 第44-59页 |
| 研究内容 | 第44页 |
| 研究背景 | 第44-49页 |
| 实验研究 | 第49-58页 |
| 1.实验材料 | 第49-51页 |
| ·实验动物 | 第49页 |
| ·药物及试剂 | 第49-50页 |
| ·实验仪器 | 第50-51页 |
| 2.实验方法 | 第51-54页 |
| ·拉制电极 | 第51页 |
| ·切片 | 第51页 |
| ·全细胞膜片钳记录 | 第51-53页 |
| ·龙胆苦苷抑制NR2B介导的EPSCs | 第52页 |
| ·双脉冲异化(PPF) | 第52-53页 |
| ·AMPA介导的mEPSCs | 第53页 |
| ·GABA_A介导mIPSCs | 第53页 |
| ·数据采集和处理 | 第53-54页 |
| 3.结果和讨论 | 第54-58页 |
| ·龙胆苦苷抑制NR2B介导的EPSCs | 第54-55页 |
| ·双脉冲异化(PPF) | 第55-56页 |
| ·AMPA介导的mEPSCs | 第56-57页 |
| ·GABA_A介导sIPSCs | 第57-58页 |
| 讨论 | 第58-59页 |
| 二 免疫组织化学法 | 第59-70页 |
| 研究内容 | 第59页 |
| 研究背景 | 第59-63页 |
| 实验研究 | 第63-70页 |
| 1.实验材料 | 第63-65页 |
| ·实验动物 | 第63页 |
| ·药物及试剂 | 第63-64页 |
| ·仪器 | 第64-65页 |
| 2.实验方法 | 第65-70页 |
| ·组织灌注和固定 | 第65页 |
| ·切片 | 第65页 |
| ·SABC法免疫组化 | 第65-66页 |
| ·DAB显色 | 第66页 |
| ·脱水、透明、封片、镜检 | 第66-70页 |
| 三 蛋白印迹(Western Blot)法 | 第70-80页 |
| 研究内容 | 第70页 |
| 研究背景 | 第70-71页 |
| 实验研究 | 第71-80页 |
| 1.实验材料 | 第71-74页 |
| ·实验动物 | 第71页 |
| ·药物及试剂 | 第71-73页 |
| ·仪器 | 第73-74页 |
| 2.实验研究 | 第74-77页 |
| ·组织中总蛋白的提取 | 第74页 |
| ·蛋白含量的测定 | 第74-75页 |
| ·SDS—PAGE电泳 | 第75页 |
| ·转膜 | 第75-76页 |
| ·Western Blot膜的封闭和抗体孵育 | 第76页 |
| ·化学发光、显影、定影 | 第76-77页 |
| ·凝胶图象分析 | 第77页 |
| 3.结果与讨论 | 第77-80页 |
| 参考文献 | 第80-86页 |
| 第四章 抗柯萨奇病毒实验 | 第86-98页 |
| 研究内容 | 第86页 |
| 研究背景 | 第86-87页 |
| 实验研究 | 第87-97页 |
| 1.实验材料 | 第87-88页 |
| ·实验动物 | 第87页 |
| ·药物及试剂 | 第87-88页 |
| ·实验仪器 | 第88页 |
| 2.实验方法 | 第88-92页 |
| ·原代乳鼠心肌细胞的制备 | 第88-89页 |
| ·药物细胞毒性实验 | 第89-90页 |
| ·病毒滴度 | 第90-91页 |
| ·直接灭活CVB3的作用 | 第91页 |
| ·对CVB_3增殖的抑制作用 | 第91页 |
| ·对CVB_3感染细胞的阻断作用 | 第91-92页 |
| ·对CVB3病毒感染后心肌细胞酶释放量的影响 | 第92页 |
| ·统计方法 | 第92页 |
| 3.结果和讨论 | 第92-97页 |
| ·对心肌细胞的毒性 | 第92-93页 |
| ·直接灭活CVB_3的作用 | 第93-94页 |
| ·对CVB_3感染细胞的阻断作用 | 第94页 |
| ·对CVB_3增殖的抑制作用 | 第94-95页 |
| ·对CVB3感染后心肌细胞酶释放量的影响 | 第95-97页 |
| 参考文献 | 第97-98页 |
| 第五章 体外抑制肿瘤实验 | 第98-103页 |
| 研究内容 | 第98页 |
| 研究背景 | 第98-99页 |
| 实验研究 | 第99-102页 |
| 1.实验材料 | 第99-100页 |
| ·药物及试剂 | 第99页 |
| ·仪器 | 第99-100页 |
| 2.实验方法和结果 | 第100-101页 |
| ·接种细胞 | 第100页 |
| ·给药 | 第100-101页 |
| ·呈色 | 第101页 |
| 3.讨论 | 第101-102页 |
| 参考文献 | 第102-103页 |
| 全文总结 | 第103-104页 |
| 创新点 | 第104-105页 |
| 发表文章学术活动 | 第105-106页 |
| 致谢 | 第106-107页 |
| 附录 | 第107-117页 |