| 摘要 | 第1-8页 |
| ABSTRACT | 第8-14页 |
| 第一章 绪论 | 第14-22页 |
| ·循环核酸 | 第14页 |
| ·循环RNA | 第14-22页 |
| ·循环RNA的发现 | 第14页 |
| ·循环RNA的来源 | 第14-15页 |
| ·循环RNA的生物学性质 | 第15-16页 |
| ·循环RNA与临床检验 | 第16-18页 |
| ·循环RNA的检测方法 | 第18-19页 |
| ·现存问题与展望 | 第19-22页 |
| 第二章 研究目的、方法、实验设计方案和意义 | 第22-26页 |
| ·研究目的 | 第22页 |
| ·研究方法 | 第22-23页 |
| ·实验设计方案 | 第23-25页 |
| ·体外培养细胞上清RNA研究 | 第23-24页 |
| ·外周血浆循环RNA检测 | 第24-25页 |
| ·研究意义 | 第25-26页 |
| 第三章 血清饥饿、缺氧和低温对肿瘤细胞释放RNA的影响 | 第26-36页 |
| ·试剂与仪器 | 第26-27页 |
| ·主要试剂 | 第26-27页 |
| ·主要仪器、耗材 | 第27页 |
| ·方法 | 第27-29页 |
| ·细胞培养 | 第27-28页 |
| ·上清RNA提取 | 第28-29页 |
| ·LDH测定 | 第29页 |
| ·DAPI染色 | 第29页 |
| ·统计分析 | 第29页 |
| ·结果 | 第29-34页 |
| ·肿瘤细胞释放RNA与细胞生长状态有关 | 第29页 |
| ·血清饥饿培养使上清RNA下降 | 第29页 |
| ·缺氧使上清RNA升高 | 第29-30页 |
| ·低温使上清RNA下降 | 第30-34页 |
| ·讨论 | 第34-36页 |
| 第四章 循环RNA用于疗效监测的体外研究及部分生物学性质 | 第36-46页 |
| ·试剂与仪器 | 第36-37页 |
| ·主要试剂 | 第36页 |
| ·主要仪器、耗材 | 第36-37页 |
| ·方法 | 第37-39页 |
| ·药物干预模型的建立 | 第37页 |
| ·胞内与胞外RNA基因表达分析 | 第37页 |
| ·过滤实验 | 第37页 |
| ·RNA提取 | 第37-38页 |
| ·逆转录反应 | 第38页 |
| ·巢式荧光定量PCR | 第38-39页 |
| ·数据处理与统计 | 第39页 |
| ·结果 | 第39-42页 |
| ·药物干预后上清RNA下降 | 第39页 |
| ·巢式定量PCR方法学的建立 | 第39页 |
| ·细胞内外RNA基因表达差别 | 第39页 |
| ·过滤试验 | 第39-42页 |
| ·讨论 | 第42-46页 |
| 第五章 联合检测血浆CXCR4、Bmi-1基因对胃癌诊疗的意义 | 第46-58页 |
| ·试剂与仪器 | 第46-47页 |
| ·主要试剂 | 第46-47页 |
| ·主要仪器 | 第47页 |
| ·材料与方法 | 第47-48页 |
| ·材料 | 第47页 |
| ·标本处理 | 第47页 |
| ·巢式(荧光定量)PCR | 第47-48页 |
| ·CEA、CA19-9含量测定 | 第48页 |
| ·数据处理与统计 | 第48页 |
| ·结果 | 第48-56页 |
| ·肿瘤患者血浆CXCR4、Bmi-1基因表达上调 | 第48-49页 |
| ·肿瘤患者血浆CEA、CA19-9含量增高 | 第49页 |
| ·联合检测血浆CXCR4、Bmi-1基因对胃癌的诊断价值 | 第49页 |
| ·血浆CXCR4与Bmi-1基因表达有相关性 | 第49页 |
| ·血浆基因表达与CEA、CA19-9含量的关系 | 第49页 |
| ·联合检测血浆CXCR4、Bmi-1基因与临床资料的相关性分析 | 第49-56页 |
| ·讨论 | 第56-58页 |
| 结论及展望 | 第58-60页 |
| 致谢 | 第60-62页 |
| 参考文献 | 第62-72页 |
| 攻读硕士学位期间获奖及发表的学术论文 | 第72-74页 |
