| 致谢 | 第1-9页 |
| 摘要 | 第9-11页 |
| 第一章 文献综述 | 第11-26页 |
| 1 鸡CD4和CD8分子研究进展 | 第11-17页 |
| ·鸡CD4、CD8与T细胞发育及分布 | 第11-12页 |
| ·鸡CD4和CD8的分子结构 | 第12-15页 |
| ·CD4分子结构 | 第12-13页 |
| ·CD8分子结构 | 第13-15页 |
| ·鸡CD4和CD8的基因 | 第15-16页 |
| ·鸡CD4和CD8分子的生物学效应 | 第16页 |
| ·CD4分子的生物学效应 | 第16页 |
| ·CD8分子的生物学效应 | 第16页 |
| ·T细胞亚群检测的意义 | 第16-17页 |
| 2 家禽的免疫球蛋白 | 第17-22页 |
| ·Ig的基本结构 | 第17页 |
| ·Ig的分类与特征 | 第17页 |
| ·禽各类免疫球蛋白的理化特性及生物学功能 | 第17-22页 |
| ·免疫球蛋白的生物效应 | 第22页 |
| 3 鸡生长与免疫抑制综合征(CSIS)研究进展 | 第22-26页 |
| ·流行病学和临床症状 | 第22-23页 |
| ·病毒的结构形态 | 第23页 |
| ·病毒的生长特性 | 第23-24页 |
| ·病毒的鉴定 | 第24-25页 |
| ·病毒的归类 | 第25页 |
| ·病毒检测方法的建立 | 第25页 |
| ·病毒造成生长和免疫抑制的机理 | 第25-26页 |
| 引言 | 第26-28页 |
| 第二章 CSISV对肉仔鸡CD3~+、CD4~+、CD8~+T细胞的影响 | 第28-67页 |
| 1 材料和方法 | 第28-34页 |
| ·材料 | 第28-29页 |
| ·SPF鸡胚: | 第28页 |
| ·病毒: | 第28页 |
| ·试验动物: | 第28页 |
| ·主要试剂及其配制 | 第28-29页 |
| ·主要仪器 | 第29页 |
| ·方法 | 第29-34页 |
| ·鸡的人工感染病毒试验 | 第29页 |
| ·鸡的饲养管理 | 第29-30页 |
| ·CSISV感染肉仔鸡后的临床症状和主要免疫器官的病理变化 | 第30页 |
| ·感染CSISV后免疫器官重量的测定 | 第30页 |
| ·CD3~+、CD4~+和CD8~+T淋巴细胞亚群的检测 | 第30-33页 |
| ·样品的制备 | 第30-32页 |
| ·流式细胞仪分析样品步骤: | 第32-33页 |
| ·数据的处理 | 第33-34页 |
| 2 结果与分析 | 第34-63页 |
| ·肉仔鸡人工感染CSISV的临床症状 | 第34页 |
| ·CSISV对主要免疫器官重量的影响 | 第34-39页 |
| ·胸腺的剖检及重量变化 | 第34-35页 |
| ·脾脏的剖检及重量变化 | 第35-37页 |
| ·法氏囊的剖检及重量变化 | 第37-39页 |
| ·CSISV感染后CD3~+T细胞的变化 | 第39-45页 |
| ·胸腺中CD3~+T细胞的变化 | 第39-40页 |
| ·脾脏中CD3~+T细胞的变化 | 第40-41页 |
| ·法氏囊中CD3~+T细胞的变化 | 第41-42页 |
| ·血液中CD3~+T细胞的变化 | 第42-45页 |
| ·CSISV感染后CD4~+T细胞的变化 | 第45-51页 |
| ·胸腺中CD4~+T细胞的变化 | 第45-46页 |
| ·脾脏中CD4~+T细胞的变化 | 第46-47页 |
| ·法氏囊中CD4~+T细胞的变化 | 第47-48页 |
| ·血液中CD4~+T细胞的变化 | 第48-51页 |
| ·CSISV感染后CD8~+T细胞的变化 | 第51-57页 |
| ·胸腺中CD8~+T细胞的变化 | 第51-52页 |
| ·脾脏中CD8~+T细胞的变化 | 第52-53页 |
| ·法氏囊中CD8~+T细胞的变化 | 第53-54页 |
| ·血液中CD8~+T细胞的变化 | 第54-57页 |
| ·CSISV感染后CD4~+/CD8~+比值的变化 | 第57-63页 |
| ·胸腺中CD4~+/CD8~+比值的变化 | 第57-58页 |
| ·脾脏中CD4~+/CD8~+比值的变化 | 第58-59页 |
| ·法氏囊中CD4~+/CD8~+比值的变化 | 第59-60页 |
| ·血液中CD4~+/CD8~+比值的变化 | 第60-63页 |
| 3 讨论 | 第63-66页 |
| ·关于流式细胞仪测定T细胞亚群 | 第63-64页 |
| ·CD分子水平与细胞免疫功能的关系 | 第64-66页 |
| 4 小结 | 第66-67页 |
| 第三章 CSISV对SIgA和ND、IBD特异性抗体的影响 | 第67-77页 |
| 1 材料与方法 | 第67-71页 |
| ·材料 | 第67-68页 |
| ·病毒和标准血清 | 第67页 |
| ·试验动物 | 第67页 |
| ·疫苗 | 第67页 |
| ·主要试剂及其配制 | 第67-68页 |
| ·主要仪器 | 第68页 |
| ·方法 | 第68-71页 |
| ·试验动物分组与处理 | 第68页 |
| ·血清的制备 | 第68页 |
| ·间接ELISA法检测血清中SIgA的含量 | 第68-69页 |
| ·HI法检测血清中的ND特异性抗体 | 第69-70页 |
| ·AGP法检测血清中的IBD特异性抗体 | 第70页 |
| ·数据的处理 | 第70-71页 |
| 2 结果与分析 | 第71-75页 |
| ·CSISV对SIgA含量的影响 | 第71-73页 |
| ·样本最佳稀释度的确定 | 第71页 |
| ·标准曲线的绘制 | 第71页 |
| ·特异性 | 第71页 |
| ·检测范围及灵敏度 | 第71-72页 |
| ·血清中SIgA的ELISA检测 | 第72-73页 |
| ·CSISV对ND特异性抗体产生的影响 | 第73-74页 |
| ·CSISV对IBD特异性抗体产生的影响 | 第74-75页 |
| 3 讨论 | 第75-76页 |
| ·CSISV对SIgA含量的影响 | 第75-76页 |
| ·CSISV对ND、IBD特异性抗体产生的影响 | 第76页 |
| 4 小结 | 第76-77页 |
| 结论 | 第77-78页 |
| 参考文献 | 第78-83页 |
| 英文摘要 | 第83-86页 |
| 附图 | 第86-89页 |
