| 摘要 | 第1-20页 |
| Abstract | 第20-24页 |
| 符号说明 | 第24-26页 |
| 第一章 前言 | 第26-43页 |
| 1 肿瘤的血管生成 | 第26-30页 |
| ·肿瘤血管生成过程 | 第27-28页 |
| ·肿瘤血管生成相关分子 | 第28-30页 |
| 2 糖类及其衍生物与肿瘤 | 第30-35页 |
| ·糖类与肿瘤 | 第30-32页 |
| ·糖类衍生物与肿瘤 | 第32-35页 |
| 3 肿瘤血管生成模型 | 第35-39页 |
| ·血管生成的离体模型 | 第35-36页 |
| ·血管生成的在体模型 | 第36-38页 |
| ·血管生成的整体动物模型 | 第38-39页 |
| 4 肿瘤血管抑制剂 | 第39-41页 |
| ·肿瘤血管抑制剂的研究策略 | 第39-40页 |
| ·肿瘤血管抑制剂的研究进展 | 第40-41页 |
| 5 本课题已有的研究基础 | 第41页 |
| 6 本课题拟解决的问题 | 第41-43页 |
| 第二章 PSPMOS的分离制备 | 第43-68页 |
| 1 材料 | 第43-44页 |
| ·试剂 | 第43页 |
| ·仪器 | 第43-44页 |
| 2 方法 | 第44-57页 |
| ·种子的复苏、培养 | 第44页 |
| ·PMP的发酵 | 第44-45页 |
| ·PMP除蛋白 | 第45页 |
| ·紫外光谱扫描 | 第45页 |
| ·总糖含量的测定 | 第45-46页 |
| ·PMP的单糖组成分析 | 第46-48页 |
| ·PSPMOS的制备 | 第48-51页 |
| ·PSPMOS理化性质 | 第51-54页 |
| ·PSPMOS的分离纯化 | 第54-57页 |
| 3 结果 | 第57-66页 |
| ·PMP的制备 | 第57页 |
| ·PMP紫外光谱 | 第57页 |
| ·总糖含量的测定 | 第57-58页 |
| ·PMP的单糖组成分析 | 第58-60页 |
| ·PSPMOS的制备 | 第60-61页 |
| ·PSPMOS理化性质 | 第61-64页 |
| ·PSPMOS的分离纯化 | 第64-66页 |
| 4 讨论 | 第66-68页 |
| ·PMP的水解 | 第66页 |
| ·PMP的单糖组成分析 | 第66页 |
| ·MOS的制备 | 第66-67页 |
| ·PSPMOS的制备 | 第67-68页 |
| 第三章 抗血管生成活性寡糖单体的筛选 | 第68-77页 |
| 1 材料 | 第68页 |
| ·试剂 | 第68页 |
| ·仪器 | 第68页 |
| 2 方法 | 第68-70页 |
| ·载体的制备 | 第68页 |
| ·CAM模型的建立 | 第68-69页 |
| ·加药 | 第69页 |
| ·结果观察 | 第69-70页 |
| ·数据处理 | 第70页 |
| 3 结果 | 第70-73页 |
| ·鸡胚发育及存活情况观察: | 第70页 |
| ·不同PSPMOS对CAM血管生成的作用 | 第70-73页 |
| 4.讨论 | 第73-77页 |
| 第四章 PSPMOS-3的结构研究 | 第77-88页 |
| 1 材料 | 第77页 |
| ·试剂 | 第77页 |
| ·仪器 | 第77页 |
| 2 方法 | 第77-78页 |
| ·PSPMOS-3紫外光谱测定 | 第77页 |
| ·PSPMOS-3红外光谱测定 | 第77页 |
| ·PSPMOS-3质谱测定 | 第77-78页 |
| ·PSPMOS-3核磁共振图谱测定 | 第78页 |
| 3 结果 | 第78-85页 |
| ·PSPMOS-3的紫外扫描结果 | 第78页 |
| ·PSPMOS-3的红外光谱测定 | 第78-80页 |
| ·PSPMOS-3的质谱测定 | 第80-82页 |
| ·PSPMOS的核磁共振测定 | 第82-85页 |
| 4 讨论 | 第85-88页 |
| ·UV | 第85页 |
| ·IR | 第85页 |
| ·MS | 第85-86页 |
| ·NMR | 第86-88页 |
| 第五章 PSPMOS-3对血管内皮细胞及肿瘤细胞血管生长相关因子的影响 | 第88-115页 |
| 1 材料 | 第88-91页 |
| ·试剂 | 第88页 |
| ·仪器 | 第88-89页 |
| ·试剂配制 | 第89-91页 |
| 2 方法 | 第91-98页 |
| ·细胞的复苏、传代与冻存 | 第91-92页 |
| ·脐静脉内皮细胞实验 | 第92-93页 |
| ·肿瘤细胞生长抑制实验 | 第93-94页 |
| ·PSPMOS-3对肿瘤细胞血管生长相关因子的作用 | 第94-98页 |
| ·数据处理 | 第98页 |
| 3 结果 | 第98-111页 |
| ·PSPMOS-3对HUVEC增殖的抑制 | 第98-99页 |
| ·PSPMOS-3对HUVEC迁移的抑制 | 第99-101页 |
| ·PSPMOS-3对肿瘤细胞生长的抑制 | 第101-103页 |
| ·PSPMOS-3对SKOV3分泌VEGF的抑制 | 第103-106页 |
| ·PSPMOS-3对SKOV3分泌bFGF的抑制 | 第106-110页 |
| ·PSPMOS-3对SKOV3细胞MMP-2表达的抑制 | 第110-111页 |
| 4 讨论 | 第111-115页 |
| ·PSPMOS-3对细胞增殖的影响 | 第111-113页 |
| ·PSPMOS-3对SKOV3细胞VEGF和bFGF分泌的影响 | 第113-114页 |
| ·PSPMOS-3对SKOV3细胞MMP-2表达的影响 | 第114-115页 |
| 第六章 PSPMOS-3抗肿瘤血管生成的体内实验研究 | 第115-135页 |
| 1 材料 | 第115页 |
| ·试剂 | 第115页 |
| ·仪器 | 第115页 |
| ·动物 | 第115页 |
| 2 方法 | 第115-121页 |
| ·PSPMOS-3对CAM血管生成的作用 | 第115-117页 |
| ·PSPMOS-3对H_(22)荷瘤小鼠肿瘤生长的影响 | 第117页 |
| ·PSPMOS-3对H_(22)肿瘤病理形态的影响 | 第117-118页 |
| ·VEGF表达水平的测定 | 第118-120页 |
| ·MVD表达水平的测定 | 第120页 |
| ·MMP-2表达水平的测定 | 第120-121页 |
| ·数据处理 | 第121页 |
| 3 结果 | 第121-131页 |
| ·不同浓度PSPMOS-3对CAM血管生成的影响 | 第121-122页 |
| ·PSPMOS-3对H_(22)荷瘤小鼠肿瘤生长的抑制作用 | 第122-123页 |
| ·PSPMOS-3对H_(22)肿瘤病理形态的影响 | 第123-125页 |
| ·PSPMOS-3对H_(22)肿瘤VEGF表达的抑制 | 第125-127页 |
| ·PSPMOS-3对H_(22)肿瘤MVD的抑制 | 第127-129页 |
| ·PSPMOS-3对H_(22)肿瘤MMP-2表达的抑制 | 第129-131页 |
| 4 讨论 | 第131-135页 |
| ·PSPMOS-3对CAM血管生成的抑制 | 第131页 |
| ·PSPMOS-3对小鼠H_(22)肿瘤的抑制作用 | 第131-132页 |
| ·PSPMOS-3对肿瘤血管生成相关因子表达的影响 | 第132-135页 |
| 总结 | 第135-137页 |
| 参考文献 | 第137-150页 |
| 致谢 | 第150-151页 |
| 攻读硕士学位期间发表的学术论文 | 第151-152页 |
| 学位论文评阅及答辩情况表 | 第152页 |
