| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-7页 |
| 1 绪论 | 第10-17页 |
| 1.1 引言 | 第10页 |
| 1.2 植物盐害及抗逆机理研究进展 | 第10-13页 |
| 1.2.1 盐渍化土壤对植物的损害 | 第10-12页 |
| 1.2.1.1 盐渍化土壤对植物形态的影响 | 第10-11页 |
| 1.2.1.2 盐胁迫对植物生理的影响 | 第11-12页 |
| 1.2.2 植物的耐盐机理 | 第12-13页 |
| 1.3 植物信号转导途径研究进展 | 第13-14页 |
| 1.3.1 SOS信号转导途径 | 第13-14页 |
| 1.3.2 蛋白激酶与信号转导 | 第14页 |
| 1.4 SOS3基因研究现状及趋势 | 第14-15页 |
| 1.5 研究目的与意义 | 第15-16页 |
| 1.6 技术路线 | 第16-17页 |
| 2 不同胁迫处理下柽柳ThSOSs基因的表达分析 | 第17-26页 |
| 2.1 实验材料 | 第17页 |
| 2.1.1 植物材料 | 第17页 |
| 2.1.2 载体与菌株 | 第17页 |
| 2.1.3 主要试剂 | 第17页 |
| 2.2 实验方法 | 第17-20页 |
| 2.2.1 柽柳RNA的提取和反转录 | 第17-18页 |
| 2.2.2 柽柳ThSOSs基因生物信息学分析 | 第18-19页 |
| 2.2.3 实时荧光定量RT-PCR | 第19-20页 |
| 2.3 结果分析 | 第20-25页 |
| 2.3.1 柽柳ThSOSs基因生物信息学分析 | 第20-23页 |
| 2.3.2 ThSOS基因响应不同胁迫表达模式分析 | 第23-25页 |
| 2.4 本章小结 | 第25-26页 |
| 3 过表达ThSOS3基因拟南芥抗逆功能分析 | 第26-48页 |
| 3.1 实验材料 | 第26-27页 |
| 3.1.1 植物材料 | 第26页 |
| 3.1.2 菌种与载体 | 第26页 |
| 3.1.3 常用试剂 | 第26页 |
| 3.1.4 药品及培养基配置 | 第26-27页 |
| 3.2 实验方法 | 第27-36页 |
| 3.2.1 植物过表达载体的构建 | 第27-31页 |
| 3.2.2 过表达ThSOS3基因拟南芥的获得 | 第31-32页 |
| 3.2.3 非生物胁迫下转基因拟南芥幼苗的抗逆分析 | 第32页 |
| 3.2.4 非生物胁迫下转基因拟南芥成苗的抗逆分析 | 第32-36页 |
| 3.3 结果与分析 | 第36-46页 |
| 3.3.1 植物过表达载体的构建 | 第36-37页 |
| 3.3.2 转基因拟南芥的PCR鉴定 | 第37页 |
| 3.3.3 非生物胁迫下转基因拟南芥幼苗的抗逆分析 | 第37-44页 |
| 3.3.4 非生物胁迫下转基因拟南芥成苗的抗逆分析 | 第44-46页 |
| 3.4 本章小结 | 第46-48页 |
| 4 瞬时转化ThSOS3基因柽柳的耐盐能力分析 | 第48-62页 |
| 4.1 实验材料 | 第48页 |
| 4.1.1 植物材料 | 第48页 |
| 4.1.2 菌株与载体 | 第48页 |
| 4.1.3 主要试剂 | 第48页 |
| 4.2 实验方法 | 第48-55页 |
| 4.2.1 pFGC5941-ThSOS3-Cis的构建 | 第48-51页 |
| 4.2.2 pFGC5941- ThSOS3-Anti的构建 | 第51-52页 |
| 4.2.3 柽柳瞬时转化 | 第52-53页 |
| 4.2.4 实时荧光定量RT-PCR | 第53-55页 |
| 4.2.5 组织化学染色 | 第55页 |
| 4.2.6 生理指标的测定 | 第55页 |
| 4.3 结果与分析 | 第55-60页 |
| 4.3.1 pFGC5941-ThSOS3抑制表达载体的构建 | 第55-56页 |
| 4.3.2 瞬时表达柽柳的获得 | 第56-57页 |
| 4.3.3 非生物胁迫下瞬时转基因柽柳苗的组织化学染色分析 | 第57-58页 |
| 4.3.4 非生物胁迫下瞬时转基因柽柳的生理生化指标分析 | 第58-60页 |
| 4.4 本章小结 | 第60-62页 |
| 5 讨论 | 第62-64页 |
| 结论 | 第64-65页 |
| 参考文献 | 第65-69页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文 | 第69-70页 |
| 致谢 | 第70-71页 |
