| 摘要 | 第5-8页 |
| Abstract | 第8-11页 |
| 主要缩略词与符号表 | 第16-19页 |
| 第一章 绪论 | 第19-49页 |
| 1.1 引言 | 第19-20页 |
| 1.2 载药纳米胶囊 | 第20-31页 |
| 1.2.1 纳米胶囊的合成 | 第21-24页 |
| 1.2.2 纳米胶囊的物理化学性质 | 第24-26页 |
| 1.2.3 纳米胶囊的应用 | 第26-28页 |
| 1.2.4 载药纳米胶囊的靶向修饰 | 第28-29页 |
| 1.2.5 二氧化硅纳米胶囊的研究进展 | 第29-31页 |
| 1.3 TRAIL | 第31-38页 |
| 1.3.1 TRAIL的基本结构 | 第31页 |
| 1.3.2 TRAIL的受体 | 第31-32页 |
| 1.3.3 TRAIL诱导凋亡的机制 | 第32-34页 |
| 1.3.4 正常细胞逃逸机制 | 第34页 |
| 1.3.5 TRAIL耐受产生的机制 | 第34-37页 |
| 1.3.6 克服TRAIL耐受的途径 | 第37-38页 |
| 1.4 紫杉醇 | 第38-39页 |
| 1.5 肝癌 | 第39-40页 |
| 1.6 乳腺癌 | 第40页 |
| 1.7 肿瘤多药耐药性简介 | 第40-45页 |
| 1.7.1 肿瘤多药耐药的机制 | 第41-43页 |
| 1.7.2 肿瘤多药耐药性的治疗策略 | 第43-45页 |
| 1.8 蛋白组学研究方法 | 第45-47页 |
| 1.8.1 双向电泳与质谱结合 | 第45-46页 |
| 1.8.2 多维液相色谱与质谱结合 | 第46页 |
| 1.8.3 蛋白质芯片技术 | 第46-47页 |
| 1.9 课题研究的目的意义及创新 | 第47-49页 |
| 第二章 复合纳米胶囊PFPSNT的制备与表征 | 第49-73页 |
| 2.1 实验主要仪器及试剂 | 第49-53页 |
| 2.1.1 主要仪器 | 第49-50页 |
| 2.1.2 主要试剂 | 第50-52页 |
| 2.1.3 主要溶液的配制 | 第52-53页 |
| 2.2 实验方法 | 第53-61页 |
| 2.2.1 Pluronic F127的羧基化修饰 | 第53-54页 |
| 2.2.2 F127/P123复合纳米胶束与胶囊的制备 | 第54-55页 |
| 2.2.3 F127/P123复合纳米胶束与胶囊的表征 | 第55-57页 |
| 2.2.4 F127/P123复合纳米胶囊与TRAIL的偶联 | 第57-61页 |
| 2.3 结果分析 | 第61-71页 |
| 2.3.1 F127-COOH的表征与最佳反应条件优化 | 第61-62页 |
| 2.3.2 PTX-NCs的形貌与粒径 | 第62-64页 |
| 2.3.3 PTX-NCs与PTX-NMs的光动力学粒径及稳定性 | 第64-66页 |
| 2.3.4 PTX-NCs与PTX-NMs的载药量与缓释性能 | 第66-67页 |
| 2.3.5 PTX-NCs与TRAIL的偶联 | 第67-71页 |
| 2.4 本章小结 | 第71-73页 |
| 第三章 复合纳米胶囊PFPSNT对肝癌的靶向治疗性能研究 | 第73-87页 |
| 3.1 实验材料、仪器及试剂 | 第73-76页 |
| 3.1.1 实验材料 | 第73-74页 |
| 3.1.2 主要仪器 | 第74-75页 |
| 3.1.3 主要试剂 | 第75-76页 |
| 3.2 实验方法 | 第76-79页 |
| 3.2.1 复合纳米胶囊对HepG 2和CaSki的增殖抑制实验 | 第76-77页 |
| 3.2.2 复合纳米胶囊对HepG 2细胞的靶向作用 | 第77页 |
| 3.2.3 荷肝癌种植瘤裸鼠模型的建立 | 第77-78页 |
| 3.2.4 对荷瘤裸鼠的给药及生理指标的检测 | 第78页 |
| 3.2.5 瘤组织染色及生理生化分析 | 第78-79页 |
| 3.2.6 裸鼠正常组织的生化分析 | 第79页 |
| 3.3 实验结果 | 第79-86页 |
| 3.3.1 PFPSNT对肿瘤细胞的体外抑制 | 第79-80页 |
| 3.3.2 TRAIL-Pyrene-NCs对HepG2的靶向性 | 第80-81页 |
| 3.3.3 PFPSNT对HepG2种植瘤的治疗效果 | 第81-86页 |
| 3.4 本章小结 | 第86-87页 |
| 第四章 复合纳米胶囊PFPSNT对TRAIL耐受型乳腺癌的治疗性能研究 | 第87-117页 |
| 4.1 实验材料、仪器及试剂 | 第87-94页 |
| 4.1.1 实验材料 | 第87-88页 |
| 4.1.2 主要仪器 | 第88-89页 |
| 4.1.3 主要试剂 | 第89-92页 |
| 4.1.4 相关溶液的配制 | 第92-94页 |
| 4.2 实验方法 | 第94-99页 |
| 4.2.1 复合纳米胶囊对乳腺癌细胞MCF-7的体外抑制性研究 | 第94页 |
| 4.2.2 复合纳米胶囊对乳腺癌细胞MCF-7的靶向作用 | 第94页 |
| 4.2.3 协同用药对多药耐药细胞株MCF-7的治疗 | 第94-95页 |
| 4.2.4 荷乳腺癌种植瘤裸鼠模型的建立及相关生理生化分析 | 第95页 |
| 4.2.7 TRAIL受体在MCF-7细胞与种植瘤中表达差异分析 | 第95-96页 |
| 4.2.8 MCF-7细胞与种植瘤蛋白组差异分析 | 第96-99页 |
| 4.3 结果分析 | 第99-114页 |
| 4.3.1 纳米胶囊对MCF-7细胞的抑制效果 | 第99-100页 |
| 4.3.2 TRAIL与PTX联合用药对MCF-7的抑制效果 | 第100-101页 |
| 4.3.3 TRAIL-Pyrene-NCs对HepG2和MCF-7的靶向效果 | 第101-102页 |
| 4.3.4 PFPSNT对荷乳腺癌裸鼠的治疗效果 | 第102-106页 |
| 4.3.5 MCF-7细胞与种植瘤组织中DR4与DR5的转录水平差异 | 第106-108页 |
| 4.3.6 MCF-7细胞与种植瘤组织蛋白组差异分析 | 第108-114页 |
| 4.4 本章小结 | 第114-117页 |
| 总结与展望 | 第117-119页 |
| 参考文献 | 第119-137页 |
| 附录1: 研究生期间取得的科研成果 | 第137-139页 |
| 附录2: Laber free分析检测MCF-7细胞与MCF-7种植瘤组织的差异表达蛋白 | 第139-141页 |
| 致谢 | 第141页 |
