中文摘要 | 第4-6页 |
Abstract | 第6-7页 |
缩略语 | 第11-14页 |
前言 | 第14-18页 |
研究现状、成果 | 第14-16页 |
研究目的、方法 | 第16-18页 |
一、病人血浆质谱分析 | 第18-40页 |
1.1 对象和方法 | 第18-24页 |
1.1.1 实验试剂 | 第18-19页 |
1.1.2 病历筛选 | 第19-21页 |
1.1.3 样本采集 | 第21页 |
1.1.4 代谢组学分析样品准备 | 第21-22页 |
1.1.5 血浆样品LC-MS/MS分析 | 第22-23页 |
1.1.6 统计方法 | 第23-24页 |
1.2 结果 | 第24-35页 |
1.2.1 病人基本情况 | 第24-26页 |
1.2.2 血浆质谱分析 | 第26-28页 |
1.2.3 PGF2α 在NPDR患者血浆中浓度降低 | 第28-30页 |
1.2.4 下降的PGF2α 是NPDR的血浆标志物 | 第30-35页 |
1.3 讨论 | 第35-39页 |
1.3.1 2 型糖尿病患者与健康对照组血浆代谢产物存在表达差异 | 第36页 |
1.3.2 PUFA可保护2型糖尿病患者并发糖尿病性视网膜病变 | 第36-37页 |
1.3.3 PGF2α 是2型糖尿病患者并发NPDR的保护性因素 | 第37-39页 |
1.4 小结 | 第39-40页 |
二、PGF2α 对视网膜周细胞迁移和粘附功能的调节 | 第40-66页 |
2.1 对象和方法 | 第40-54页 |
2.1.1 实验试剂 | 第40-43页 |
2.1.2 主要试剂配制 | 第43-46页 |
2.1.3 原代牛视网膜周细胞的分离和培养 | 第46-48页 |
2.1.4 细胞免疫荧光染色和激光共聚焦分析 | 第48-49页 |
2.1.5 细胞迁移功能实验 | 第49页 |
2.1.6 细胞粘附功能实验 | 第49-50页 |
2.1.7 细胞蛋白质的提取 | 第50页 |
2.1.8 Western Blot(免疫蛋白质印记)实验 | 第50-52页 |
2.1.9 GTP-RhoA检测方法 | 第52-53页 |
2.1.10 统计方法 | 第53-54页 |
2.2 结果 | 第54-63页 |
2.2.1 高糖下调视网膜周细胞的迁移、粘附功能 | 第54-56页 |
2.2.2 PGF2α 上调视网膜周细胞的迁移功能 | 第56-57页 |
2.2.3 PGF2α 上调视网膜周细胞的粘附功能 | 第57-58页 |
2.2.4 PGF2α 促进视网膜周细胞骨架蛋白的重排 | 第58-60页 |
2.2.5 FP受体参与PGF2α 对视网膜周细胞的功能调节 | 第60-63页 |
2.2.6 PGF2α 上调视网膜周细胞RhoA蛋白活性 | 第63页 |
2.3 讨论 | 第63-65页 |
2.3.1 PGF2α/FP受体调控视网膜周细胞移动性 | 第64页 |
2.3.2 PGF2α/FP受体通过调节RhoA活性对视网膜周细胞功能进行调节 | 第64-65页 |
2.4 小结 | 第65-66页 |
三、FP受体激动剂对小鼠糖尿病视网膜病变的作用研究 | 第66-82页 |
3.1 对象和方法 | 第66-73页 |
3.1.1 实验动物 | 第66页 |
3.1.2 实验试剂 | 第66-67页 |
3.1.3 主要试剂配制 | 第67-69页 |
3.1.4 实验仪器 | 第69-70页 |
3.1.5 糖尿病小鼠模型构建 | 第70-71页 |
3.1.6 组织取材 | 第71页 |
3.1.7 视网膜免疫荧光染色和荧光共聚焦显微分析 | 第71-72页 |
3.1.8 小鼠血糖、体重监测 | 第72页 |
3.1.9 小鼠血压监测 | 第72页 |
3.1.10 统计方法 | 第72-73页 |
3.2 结果 | 第73-79页 |
3.2.1 糖尿病小鼠模型构建 | 第73-74页 |
3.2.2 FP受体激动剂逆转糖尿病导致的小鼠视网膜血管面积比例下降 | 第74-79页 |
3.3 讨论 | 第79-81页 |
3.3.1 构建糖尿病视网膜病变小鼠模型 | 第79-80页 |
3.3.2 FP受体激动剂可减弱糖尿病诱发的视网膜病变 | 第80-81页 |
3.4 小结 | 第81-82页 |
全文结论 | 第82-85页 |
论文创新点 | 第85-87页 |
参考文献 | 第87-96页 |
发表论文和参加科研情况说明 | 第96-97页 |
综述 多不饱和脂肪酸在糖尿病视网膜病变中的研究进展 | 第97-116页 |
综述参考文献 | 第106-116页 |
致谢 | 第116-118页 |
个人简历 | 第118页 |