摘要 | 第5-8页 |
Abstract | 第8-10页 |
第1章 绪论 | 第23-50页 |
1.1 镉系量子点的合成和特征 | 第23-26页 |
1.1.1 镉系量子点的合成 | 第23-24页 |
1.1.2 镉系量子点的特征 | 第24-26页 |
1.2 镉系量子点的表面修饰 | 第26-28页 |
1.2.1 无机表面修饰 | 第26-27页 |
1.2.2 有机表面修饰 | 第27-28页 |
1.3 量子点的应用 | 第28-36页 |
1.3.1 量子点应用于生物传感 | 第29-31页 |
1.3.2 量子点应用于生物成像 | 第31-36页 |
1.3.3 量子点应用于生物医学 | 第36页 |
1.4 环境因素对量子点在环境中迁移转化的影响 | 第36-41页 |
1.4.1 光 | 第37-38页 |
1.4.2 酸碱度 | 第38-39页 |
1.4.3 溶解氧 | 第39-40页 |
1.4.4 离子强度 | 第40页 |
1.4.5 天然有机质 | 第40页 |
1.4.6 胞外高聚物 | 第40-41页 |
1.5 量子点的生物毒性研究 | 第41-45页 |
1.5.1 颗粒尺寸的影响 | 第41-42页 |
1.5.2 表面壳层的影响 | 第42-43页 |
1.5.3 光分解氧化的影响 | 第43-44页 |
1.5.4 表面电荷、浓度和暴露时间的影响 | 第44-45页 |
1.6 本文构思 | 第45-50页 |
1.6.1 课题研究背景和意义 | 第45-47页 |
1.6.2 研究内容 | 第47-50页 |
第2章 水溶性CdSe/ZnS量子点在黄孢原毛平革菌体内的摄取及累积 | 第50-61页 |
2.1 前言 | 第50-51页 |
2.2 材料与方法 | 第51-53页 |
2.2.1 实验试剂 | 第51页 |
2.2.2 实验仪器 | 第51页 |
2.2.3 黄孢原毛平革菌的培养 | 第51-52页 |
2.2.4 水溶性CdSe/ZnS量子点对黄孢原毛平革菌菌球染毒处理 | 第52页 |
2.2.5 电感耦合等离子体发射光谱分析 | 第52-53页 |
2.2.6 共聚焦激光扫描显微镜定性分析 | 第53页 |
2.3 结果与讨论 | 第53-60页 |
2.3.1 水溶性CdSe/ZnS量子点的物理化学特征 | 第53-54页 |
2.3.2 水溶性CdSe/ZnS量子点在P. chrysosporium菌体内的摄取 | 第54-58页 |
2.3.3 共聚焦激光扫描显微镜结果定性分析 | 第58-60页 |
2.4 本章小结 | 第60-61页 |
第3章 水溶性CdSe/ZnS量子点在黄孢原毛平革菌体内引起的生物毒性效应 | 第61-75页 |
3.1 前言 | 第61-62页 |
3.2 材料与方法 | 第62-64页 |
3.2.1 实验试剂 | 第62页 |
3.2.2 实验仪器 | 第62页 |
3.2.3 材料的表征 | 第62-63页 |
3.2.4 黄孢原毛平革菌的培养 | 第63页 |
3.2.5 不同的接种浓度和时间 | 第63页 |
3.2.6 扫描电子显微镜(SEM)形貌观察 | 第63页 |
3.2.7 共聚焦激光扫描显微镜分析 | 第63页 |
3.2.8 活性氧团簇(ROS)测定 | 第63-64页 |
3.2.9 细胞活性检测 | 第64页 |
3.3 结果与讨论 | 第64-73页 |
3.3.1 水溶性CdSe/ZnS量子点的物理化学特征 | 第64-65页 |
3.3.2 P. chrysosporium菌球形貌分析 | 第65-67页 |
3.3.3 共聚焦激光扫描显微镜分析 | 第67-69页 |
3.3.4 水溶性CdSe/ZnS量子点在P. chrysosporium菌球体内毒性效应 | 第69-73页 |
3.4 本章小结 | 第73-75页 |
第4章 水溶性CdSe和CdSe/ZnS量子点在原核微生物和真核微生物体内的生物毒性差异性研究 | 第75-88页 |
4.1 前言 | 第75-76页 |
4.2 材料与方法 | 第76-79页 |
4.2.1 实验试剂 | 第76页 |
4.2.2 实验仪器 | 第76-77页 |
4.2.3 材料的表征 | 第77页 |
4.2.4 微生物的培养 | 第77页 |
4.2.5 细胞染毒处理 | 第77-78页 |
4.2.6 电感耦合等离子体发射光谱分析 | 第78页 |
4.2.7 质膜流动性和H~+-ATP酶活性测定 | 第78-79页 |
4.2.8 细胞活性测定 | 第79页 |
4.2.9 活性氧团簇(ROS)测定 | 第79页 |
4.3 结果与讨论 | 第79-87页 |
4.3.1 水溶性CdSe和CdSe/ZnS量子点的物理化学特征 | 第79-80页 |
4.3.2 细胞摄取Cd~(2+)、CdSe和CdSe/ZnS量子点 | 第80-81页 |
4.3.3 质膜流动性变化 | 第81-82页 |
4.3.4 H~+-ATP酶活性变化 | 第82-83页 |
4.3.5 CdCl_2、CdSe和CdSe/ZnS量子点引起的细胞毒性效应 | 第83-85页 |
4.3.6 胞内活性氧团簇(ROS)水平 | 第85-87页 |
4.4 本章小结 | 第87-88页 |
第5章 水溶性CdSe/ZnS量子点在黄孢原毛平革菌体引起细胞氧化损伤机制 | 第88-103页 |
5.1 前言 | 第88-89页 |
5.2 材料与方法 | 第89-91页 |
5.2.1 实验试剂 | 第89页 |
5.2.2 实验仪器 | 第89-90页 |
5.2.3 黄孢原毛平革菌的培养 | 第90页 |
5.2.4 水溶性CdSe/ZnS量子点对P. chrysosporium菌球染毒处理 | 第90页 |
5.2.5 脂质过氧化的测定 | 第90页 |
5.2.6 超氧自由基(O_(2·)~-)的测定 | 第90-91页 |
5.2.7 超氧化物歧化酶(SOD)的测定 | 第91页 |
5.2.8 过氧化氢酶(CAT)的测定 | 第91页 |
5.2.9 谷胱甘肽(GSH)的测定 | 第91页 |
5.3 结果与讨论 | 第91-102页 |
5.3.1 脂质过氧化分析 | 第91-93页 |
5.3.2 超氧自由基(O_(2·)~-)水平变化 | 第93-94页 |
5.3.3 超氧化物歧化酶(SOD)活性变化 | 第94-95页 |
5.3.4 过氧化氢酶(CAT)活性变化 | 第95-96页 |
5.3.5 细胞氧化应激反应与CdSe/ZnS量子点浓度的线性相关分析 | 第96-100页 |
5.3.6 谷胱甘肽(GSH)水平变化 | 第100-102页 |
5.4 本章小结 | 第102-103页 |
第6章 不同的硫源物质缓解水溶性CdSe/ZnS量子点的生物毒性及解毒机制 | 第103-119页 |
6.1 前言 | 第103-104页 |
6.2 材料与方法 | 第104-107页 |
6.2.1 实验试剂 | 第104页 |
6.2.2 实验仪器 | 第104-105页 |
6.2.3 材料的表征 | 第105页 |
6.2.4 黄孢原毛平革菌的培养 | 第105页 |
6.2.5 扫描电子显微镜(SEM)和能谱( EDS)分析 | 第105页 |
6.2.6 红外光谱(FTIR)分析 | 第105-106页 |
6.2.7 硫氢化钠和半胱氨酸对P. chrysosporium的预处理 | 第106页 |
6.2.8 细胞活性检测 | 第106页 |
6.2.9 丙二醛(MDA)含量测定 | 第106页 |
6.2.10 超氧自由基(O_(2·)~-)测定 | 第106-107页 |
6.2.11 超氧化物歧化酶(SOD)测定 | 第107页 |
6.2.12 过氧化氢酶(CAT)测定 | 第107页 |
6.2.13 谷胱甘肽(GSH)测定 | 第107页 |
6.3 结果与讨论 | 第107-118页 |
6.3.1 四种水溶性CdSe/ZnS量子点的物理化学特征 | 第107-109页 |
6.3.2 扫描电镜-能谱(SEM-EDS)分析 | 第109-110页 |
6.3.3 红外光谱(FTIR)分析 | 第110-111页 |
6.3.4 硫氢化钠和半胱氨酸缓解CdSe/ZnS量子点的毒性 | 第111-112页 |
6.3.5 丙二醛(MDA)含量变化 | 第112-113页 |
6.3.6 超氧自由基(O_(2·)~-)水平变化 | 第113-114页 |
6.3.7 抗氧化酶的解毒机制 | 第114-116页 |
6.3.8 谷胱甘肽(GSH)水平变化 | 第116-118页 |
6.4 本章小结 | 第118-119页 |
结论 | 第119-122页 |
参考文献 | 第122-140页 |
附录A 攻读学位期间发表的论文目录 | 第140-146页 |
附录B 攻读学位期间获得的发明专利 | 第146-150页 |
附录C 攻读学位期间参与的研究课题 | 第150-151页 |
附录D 攻读学位期间获得的奖励 | 第151-152页 |
致谢 | 第152页 |