| 缩略词 | 第6-8页 |
| 中文摘要 | 第8-12页 |
| Abstract | 第12-16页 |
| 前言 | 第17-24页 |
| 第一部分 恒河猴IL-22和IL-22R1基因的克隆、表达与功能分析 | 第24-61页 |
| 引言 | 第24-26页 |
| 材料与方法 | 第26-40页 |
| 1.1. 实验材料 | 第26-31页 |
| 1.2. 实验方法 | 第31-40页 |
| 实验结果 | 第40-57页 |
| 1.3.1. 恒河猴IL-22和IL-22R1基因的序列特征 | 第40-46页 |
| 1.3.2. IL-22和IL-22R1在正常恒河猴体内的分布 | 第46-48页 |
| 1.3.3. 重组恒河猴IL-22蛋白的表达及抗体制备 | 第48-51页 |
| 1.3.4. IL-22R1剪接变异体和SNP的检测 | 第51-53页 |
| 1.3.5. 恒河猴IL-22的生物功能 | 第53-57页 |
| 讨论 | 第57-60页 |
| 结论 | 第60-61页 |
| 第二部分 免疫缺陷病毒感染对IL-22和IL-22R1以及上下游基因表达的影响 | 第61-83页 |
| 引言 | 第61-62页 |
| 材料与方法 | 第62-68页 |
| 2.1. 实验材料 | 第62-64页 |
| 2.2. 实验方法 | 第64-68页 |
| 实验结果 | 第68-80页 |
| 2.3.1. IL-22和IL-22R1的表达水平在SIV/SHIV感染后显著改变 | 第68-71页 |
| 2.3.2. SIV/SHIV感染后恒河猴肠粘膜的IL-1β和IL-22R1表达水平显著升高 | 第71-72页 |
| 2.3.3. IL-1β上调HT-29细胞IL-22R1的表达 | 第72-75页 |
| 2.3.4. SIV/SHIV感染后恒河猴肠粘膜的下游信号分子及抗菌肽表达变化 | 第75-78页 |
| 2.3.5. IL-1β直接活化HT-29细胞下游STAT3信号 | 第78页 |
| 2.3.6. IL-22R1过表达促进细胞STAT3激活和细胞增殖 | 第78-80页 |
| 讨论 | 第80-82页 |
| 结论 | 第82-83页 |
| 第三部分 恒河猴XCL1和XCR1分子特性及在粘膜免疫反应诱导中的作用 | 第83-112页 |
| 引言 | 第83-85页 |
| 材料与方法 | 第85-95页 |
| 3.1. 实验材料 | 第85-88页 |
| 3.2. 实验方法 | 第88-95页 |
| 实验结果 | 第95-108页 |
| 3.3.1. 恒河猴XCL1和XCR1的分子特性 | 第95-99页 |
| 3.3.2. 靶向恒河猴XCR1~+DCs的重组质粒构建 | 第99-102页 |
| 3.3.3. 壳聚糖纳米粒的制备及理化性质 | 第102-104页 |
| 3.3.4. 壳聚糖包裹重组DNA质粒在恒河猴体内的免疫原性 | 第104-108页 |
| 讨论 | 第108-111页 |
| 结论 | 第111-112页 |
| 全文结论 | 第112-113页 |
| 附录 | 第113-114页 |
| 文献综述 | 第114-137页 |
| 参考文献 | 第123-137页 |
| 发表文章 | 第137-138页 |
| 个人简介 | 第138-139页 |
| 致谢 | 第139页 |
