| 摘要 | 第3-6页 |
| ABSTRACT | 第6-8页 |
| 1.1 前言 | 第11-15页 |
| 1.2 材料与方法 | 第15-39页 |
| 1.2.1 临床研究对象 | 第15-16页 |
| 1.2.2 实验动物 | 第16页 |
| 1.2.3 试剂及耗材 | 第16-17页 |
| 1.2.4 主要仪器 | 第17-18页 |
| 1.2.5 试剂配制 | 第18页 |
| 1.2.6 临床标本的采集 | 第18-19页 |
| 1.2.7 动物模型的建立及分组 | 第19-23页 |
| 1.2.8 侧脑室注射 | 第23页 |
| 1.2.9 改良神经功能缺损量表 | 第23-25页 |
| 1.2.10 Morris水迷宫 | 第25-26页 |
| 1.2.11 脑组织冰冻切片制备 | 第26-27页 |
| 1.2.12 TUNEL染色 | 第27-28页 |
| 1.2.13 尼氏染色(焦油紫法) | 第28页 |
| 1.2.14 免疫组化染色 | 第28-29页 |
| 1.2.15 定量PCR | 第29-32页 |
| 1.2.16 蛋白电泳 | 第32-34页 |
| 1.2.17 核蛋白及包浆蛋白的提取 | 第34-36页 |
| 1.2.18 ELISA检测法(人) | 第36-37页 |
| 1.2.19 ELISA检测法(大鼠) | 第37-38页 |
| 1.2.20 统计学方法 | 第38-39页 |
| 1.3 结果 | 第39-53页 |
| 1.3.1 CA/CPR患者及大鼠血清中HMGB1水平升高 | 第39-41页 |
| 1.3.2 TAT-HBHP通过血脑屏障进入脑实质 | 第41-42页 |
| 1.3.3 HBHP提高CA/CPR大鼠的生存率及神经功能 | 第42-44页 |
| 1.3.4 HBHP减少CA/CPR大鼠海马CA1区神经元及树突丢失 | 第44-48页 |
| 1.3.5 HBHP抑制CA/CPR大鼠大脑炎症反应 | 第48-51页 |
| 1.3.6 阻断TLR4减少CA/CPR大鼠海马CA1区神经元及树突丢失 | 第51-52页 |
| 1.3.7 阻断TLR4抑制CA/CPR大鼠海马中NF-κB的活化 | 第52-53页 |
| 1.4 讨论 | 第53-59页 |
| 1.5 结论 | 第59-60页 |
| 参考文献 | 第60-68页 |
| 附录1 英文缩略词表 | 第68-69页 |
| 附录2 知情同意书 | 第69-71页 |
| 硕士期间发表的论文 | 第71-72页 |
| 致谢 | 第72-73页 |
