| 摘要 | 第3-7页 |
| ABSTRACT | 第7-11页 |
| 前言 | 第16-21页 |
| 第一部分 RAS抑制剂对葡萄糖诱导的胰岛β细胞株身份损害的保护作用 | 第21-32页 |
| 1.1 前沿 | 第21-22页 |
| 1.2 实验材料 | 第22-24页 |
| 1.2.1 实验主要药品及试剂 | 第22-23页 |
| 1.2.2 实验主要仪器设备 | 第23页 |
| 1.2.3 实验主要试剂的配置 | 第23-24页 |
| 1.3 实验方法 | 第24-27页 |
| 1.3.1 细胞系 | 第24页 |
| 1.3.2 细胞培养 | 第24页 |
| 1.3.3 细胞分组 | 第24页 |
| 1.3.4 检测胰岛β细胞株分泌功能的改变 | 第24-25页 |
| 1.3.5 胰岛β细胞株自身转录因子Ins1、Pdx1 mRNA的改变 | 第25-27页 |
| 1.3.6 胰岛β细胞株去分化标记物Ngn3、Oct4 mRNA的改变 | 第27页 |
| 1.3.7 统计学分析 | 第27页 |
| 1.4 实验结果 | 第27-30页 |
| 1.4.1 GSIS检测Min6细胞胰岛素分泌功能 | 第27-29页 |
| 1.4.2 qPCR检测Min6细胞分化成熟标记物Ins、Pdx1 mRNA以及去分化标记物去Ngn3、Oct4 mRNA的改变 | 第29-30页 |
| 1.5 讨论 | 第30-32页 |
| 第二部分 Ang Ⅱ对胰岛β细胞株的去分化作用和NF-κb信号通路的关系 | 第32-52页 |
| 1.1 前沿 | 第32-33页 |
| 1.2 实验材料 | 第33-38页 |
| 1.2.1 实验主要药品及试剂 | 第33-35页 |
| 1.2.2 实验主要仪器设备 | 第35-36页 |
| 1.2.3 实验细胞 | 第36页 |
| 1.2.4 实验主要试剂的配置 | 第36-38页 |
| 1.3 实验方法 | 第38-43页 |
| 1.3.1 细胞培养 | 第38页 |
| 1.3.2 细胞分组 | 第38页 |
| 1.3.3 qPCR检测胰岛β细胞株去分化标记物以及炎症因子的改变 | 第38-39页 |
| 1.3.4 qPCR检测不同浓度AngⅡ刺激对胰岛β细胞株p65、IκBα、IL6mRNA的影响 | 第39页 |
| 1.3.5 WB检测AngⅡ刺激下胰岛β细胞株insulin、Ngn3、Oct4蛋白表达改变 | 第39-41页 |
| 1.3.6 ELISA检测不同浓度AngⅡ刺激对胰岛β细胞株胰岛素分泌功能的影响 | 第41-42页 |
| 1.3.7 WB检测不同浓度AngⅡ刺激对胰岛β细胞株NF-κb通路蛋白p65、p-p65、IκBα p-IκBα的影响 | 第42-43页 |
| 1.3.8 统计学分析 | 第43页 |
| 1.4 实验结果 | 第43-49页 |
| 1.4.1 qPCR检测Min6细胞去分化标记物去Ngn3、Oct4 mRNA、炎症因子IL6的改变 | 第43-45页 |
| 1.4.2 WB检测AngⅡ刺激下胰岛β细胞株insulin、Ngn3、Oct4蛋白表达改变 | 第45页 |
| 1.4.3 不同浓度AngⅡ刺激对Min6细胞胰岛素分泌功能的影响 | 第45-47页 |
| 1.4.4 不同浓度AngⅡ刺激对Min6细胞NF-Kb通路Ngn3、Oct4、p65、IκBα、以及炎症因子IL6 mRNA的影响 | 第47-48页 |
| 1.4.5 WB检测不同浓度AngⅡ刺激对Min6细胞FoxO1、Ngn3、Pdx1蛋白和NF-κb通路蛋白p65、p-p65、IκBα、p-IKBα的影响 | 第48-49页 |
| 1.5 讨论 | 第49-52页 |
| 第三部分 sc-514和Irbesartan对Ang Ⅱ灌注的db/db小鼠的胰岛β细胞的作用 | 第52-66页 |
| 1.1 前沿 | 第52-53页 |
| 1.2 实验材料 | 第53-54页 |
| 1.2.1 实验主要药品及试剂 | 第53页 |
| 1.2.2 实验主要仪器设备 | 第53-54页 |
| 1.2.3 实验主要试剂的配置 | 第54页 |
| 1.2.4 实验动物 | 第54页 |
| 1.3 实验方法 | 第54-56页 |
| 1.3.1 实验动物分组及模型的建立 | 第54-55页 |
| 1.3.2 db/db小鼠糖耐量,胰岛素分泌及血清IL6的改变 | 第55页 |
| 1.3.3 免疫荧光检测db/db小鼠胰岛蛋白表达水平 | 第55-56页 |
| 1.3.4 统计学分析 | 第56页 |
| 1.4 实验结果 | 第56-64页 |
| 1.4.1 db/db小鼠糖耐量,胰岛分泌功能及血清IL6的改变 | 第56-58页 |
| 1.4.2 免疫荧光检测db/db小鼠胰岛insulin和glucagon蛋白表达水平 | 第58-60页 |
| 1.4.3 免疫荧光检测db/db小鼠胰岛Pdx1、Ngn3蛋白表达水平 | 第60-62页 |
| 1.4.4 免疫荧光检测db/db小鼠胰岛FoxO1蛋白表达及转位情况 | 第62-64页 |
| 1.5 讨论 | 第64-66页 |
| 全文总结 | 第66-67页 |
| 参考文献 | 第67-74页 |
| 综述 | 第74-82页 |
| 参考文献 | 第79-82页 |
| 英文缩略词表 | 第82-83页 |
| 攻读学位期间成果 | 第83-84页 |
| 致谢 | 第84-86页 |
