| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 1 引言 | 第10-17页 |
| 1.1 离子束生物技术 | 第10-12页 |
| 1.1.1 离子束生物技术特征及诱变机理 | 第10-11页 |
| 1.1.2 离子束注入生物学效应 | 第11-12页 |
| 1.2 离子束介导转化外源基因组研究 | 第12-15页 |
| 1.2.1 离子束介导转化外源基因组技术 | 第12页 |
| 1.2.2 离子束介导遗传转化研究现状 | 第12-13页 |
| 1.2.3 离子束介导小麦遗传转化研究现状 | 第13-15页 |
| 1.3 本论文主要内容和研究意义 | 第15-17页 |
| 2 离子束介导转基因小麦后代变异材料主要农艺性状分析 | 第17-32页 |
| 2.1 实验材料和方法 | 第17-18页 |
| 2.1.1 实验材料 | 第17页 |
| 2.1.2 实验方法 | 第17-18页 |
| 2.2 结果与分析 | 第18-30页 |
| 2.2.1 小麦变异材料叶绿素含量分析 | 第18-21页 |
| 2.2.2 小麦变异材料叶片面积分析 | 第21-24页 |
| 2.2.3 小麦变异材料叶片厚度分析 | 第24-27页 |
| 2.2.4 小麦变异材料茎秆直径分析 | 第27-30页 |
| 2.3 小结 | 第30-32页 |
| 3 变异材料在不同逆境下幼苗期生理生化指标分析 | 第32-51页 |
| 3.1 实验材料和方法 | 第32-36页 |
| 3.1.1 实验材料 | 第32-33页 |
| 3.1.2 实验方法 | 第33页 |
| 3.1.3 变异材料抗氧化酶活性测定方法 | 第33-35页 |
| 3.1.4 变异材料叶绿素含量测定方法 | 第35页 |
| 3.1.5 变异材料丙二醛含量测定方法 | 第35-36页 |
| 3.1.6 变异材料脯氨酸含量测定方法 | 第36页 |
| 3.2 结果与分析 | 第36-49页 |
| 3.2.1 胁迫条件对小麦种子萌发和幼苗生长的影响 | 第36-38页 |
| 3.2.2 胁迫条件对小麦幼苗生长的影响 | 第38-39页 |
| 3.2.3 胁迫条件对小麦幼苗叶片叶绿素含量的影响 | 第39-41页 |
| 3.2.4 不同处理条件对小麦叶片脯氨酸含量 | 第41-42页 |
| 3.2.5 相同处理条件小麦变异材料脯氨酸含量分析 | 第42页 |
| 3.2.6 不同处理条件下小麦变异材料POD活性测定分析 | 第42-43页 |
| 3.2.7 相同处理条件下小麦变异材料叶片POD活性测定分析 | 第43-44页 |
| 3.2.8 不同处理条件下小麦变异材料CAT活性测定分析 | 第44-45页 |
| 3.2.9 相同处理条件下小麦变异材料叶片CAT活性测定分析 | 第45-46页 |
| 3.2.10 不同处理条件下小麦变异材料叶片SOD活性测定分析 | 第46-47页 |
| 3.2.11 相同处理条件下小麦变异材料叶片SOD活性测定分析 | 第47-48页 |
| 3.2.12 不同处理条件下小麦变异材料叶片MDA活性测定分析 | 第48-49页 |
| 3.2.13 相同处理条件下小麦变异材料叶片MDA活性测定分析 | 第49页 |
| 3.3 小结 | 第49-51页 |
| 4 利用IRAP分子标记对小麦抗旱品种筛选的研究分析 | 第51-56页 |
| 4.1 材料和方法 | 第51-52页 |
| 4.1.1 材料 | 第51页 |
| 4.1.2 方法 | 第51-52页 |
| 4.2 结果与分析 | 第52-55页 |
| 4.2.1 IRAP分子标记在小麦抗旱品种间的多态性位点分析 | 第52-53页 |
| 4.2.2 小麦IRAP指纹图谱 | 第53-54页 |
| 4.2.3 聚类分析 | 第54-55页 |
| 4.3 小结 | 第55-56页 |
| 参考文献 | 第56-60页 |
| 个人简历及在学期间发表学术论文 | 第60-61页 |
| 致谢 | 第61页 |
