摘要 | 第3-4页 |
ABSTRACT | 第4-5页 |
第1章 绪论 | 第8-20页 |
1.1 木质纤维素生物质能源概述 | 第8-9页 |
1.2 生物质的化学组成 | 第9-10页 |
1.2.1 木质素 | 第9页 |
1.2.2 半纤维素 | 第9-10页 |
1.3 纤维素 | 第10-13页 |
1.3.1 纤维素的结构 | 第10-11页 |
1.3.2 纤维素的预处理 | 第11页 |
1.3.3 纤维素的应用 | 第11-12页 |
1.3.4 纤维素的水解 | 第12-13页 |
1.4 离子液体概述 | 第13-18页 |
1.4.1 离子液体的定义与结构性质 | 第13-14页 |
1.4.2 合成离子液体的方法 | 第14-18页 |
1.5 离子液体双水相概述 | 第18-19页 |
l.5.1 离子液体双水相的应用 | 第18-19页 |
1.5.2 离子双水相体系优点 | 第19页 |
1.6 本文研究思路及内容 | 第19-20页 |
第2章 实验内容与方法 | 第20-32页 |
2.1 实验材料 | 第20-21页 |
2.1.1 实验原料和试剂 | 第20-21页 |
2.1.2 实验仪器和设备 | 第21页 |
2.2 实验方法 | 第21-32页 |
2.2.1 离子液体的合成 | 第21-22页 |
2.2.2 还原糖的测定方法 | 第22-24页 |
2.2.3 微晶纤维素在浓硫酸水解 | 第24-26页 |
2.2.4 微晶纤维素在离子液体中酸催化水解 | 第26-29页 |
2.2.5 在离子液体双水相中萃取葡萄糖 | 第29-32页 |
第3章 浓酸催化水解微晶纤维素工艺的研究 | 第32-38页 |
3.1 单因素实验结果与分析 | 第32-34页 |
3.1.1 反应时间的影响 | 第32页 |
3.1.2 液固比的影响 | 第32-33页 |
3.1.3 反应温度的影响 | 第33-34页 |
3.1.4 硫酸浓度的影响 | 第34页 |
3.2 微晶纤维素酸解的正交试验结果与分析 | 第34-36页 |
3.3 本章小结 | 第36-38页 |
第4章 微晶纤维素在离子液体中糖化工艺的研究 | 第38-52页 |
4.1 合成离子液体1H-NMR图谱分析 | 第38页 |
4.2 在离子液体中催化水解微晶纤维素的条件优化 | 第38-49页 |
4.2.1 在[Bmim]Cl中微晶纤维素水解的单因素实验结果与分析 | 第38-41页 |
4.2.2 在[Bmim]Cl中微晶纤维素水解正交试验结果与分析 | 第41-42页 |
4.2.3 在[Emim]Cl中微晶纤维素水解的单因素实验结果与分析 | 第42-44页 |
4.2.4 在[Emim]Cl中微晶纤维素水解的正交试验结果与分析 | 第44-45页 |
4.2.5 在[Amim]Cl中微晶纤维素水解的单因素实验结果与分析 | 第45-48页 |
4.2.6 在[Amim]Cl中微晶纤维素水解的正交试验结果与分析 | 第48-49页 |
4.3 微晶纤维素在离子液体中水解与浓酸水解的对比 | 第49-50页 |
4.3.1 微晶纤维素在离液体中水解与浓酸水解不同温度下的对比 | 第49页 |
4.3.2. 微晶纤维素在离液体中水解与浓酸水解优化条件下的对比 | 第49-50页 |
4.4 本章小结 | 第50-52页 |
第5章 双水相萃取分离葡萄糖 | 第52-60页 |
5.1 离子液体双水相的相图 | 第52-54页 |
5.1.1 温度对双水相形成的影响 | 第52-53页 |
5.1.2 盐种类对双水相形成的影响 | 第53-54页 |
5.2 双水相对葡萄糖的萃取 | 第54-57页 |
5.3 双水相对离子液体中酸解的还原糖分离 | 第57-58页 |
5.4 本章小结 | 第58-60页 |
第6章 结论 | 第60-62页 |
参考文献 | 第62-68页 |
附录 | 第68-71页 |
致谢 | 第71-72页 |
硕士学位期间的研究成果 | 第72页 |
一、在校期间发表的与学位论文相关的学术论文及专利 | 第72页 |
二、攻读硕士学位期间参与的科研项目 | 第72页 |