摘要 | 第3-4页 |
ABSTRACT | 第4-5页 |
第一章 绪论 | 第9-18页 |
1.1 神经损伤与修复 | 第9-10页 |
1.2 壳聚糖的概述 | 第10-12页 |
1.2.1 壳聚糖的结构与性能 | 第10-11页 |
1.2.2 壳聚糖支架的制备及在生物医学领域的应用 | 第11-12页 |
1.3 海藻酸盐的概述 | 第12-16页 |
1.3.1 海藻酸盐在神经再生中的应用 | 第13-16页 |
1.4 本论文的主要研究内容及创新点 | 第16-18页 |
1.4.1 研究目的 | 第16-17页 |
1.4.2 研究内容 | 第17页 |
1.4.3 创新性 | 第17-18页 |
第二章 壳聚糖/F-SAP复合支架材料的制备及评价 | 第18-32页 |
2.1 引言 | 第18-19页 |
2.2 实验材料与方法 | 第19-24页 |
2.2.1 实验所用材料与仪器 | 第19-20页 |
2.2.2 壳聚糖/F-SAP支架的制备 | 第20页 |
2.2.3 壳聚糖/F-SAP支架的形貌分析 | 第20-21页 |
2.2.4 壳聚糖/F-SAP水凝胶的流变性能分析 | 第21页 |
2.2.5 壳聚糖/F-SAP支架的力学性能分析 | 第21页 |
2.2.6 壳聚糖/F-SAP支架吸水率的测定 | 第21页 |
2.2.7 壳聚糖/F-SAP支架孔隙率的测定 | 第21-22页 |
2.2.8 细胞毒性测定 | 第22-23页 |
2.2.9 壳聚糖/F-SAP支架浸提液对神经干细胞分化的影响 | 第23-24页 |
2.2.10 壳聚糖/F-SAP与神经干细胞的相互作用 | 第24页 |
2.3 结果及讨论 | 第24-31页 |
2.3.1 壳聚糖/F-SAP支架的外观形貌 | 第24-25页 |
2.3.2 壳聚糖/F-SAP支架微观结构的观察 | 第25页 |
2.3.3 F-SAP的含量对支架流变性能的影响 | 第25-26页 |
2.3.4 F-SAP的含量对支架压缩力学性能的影响 | 第26-27页 |
2.3.5 F-SAP的含量对支架吸水率的影响 | 第27页 |
2.3.6 F-SAP的含量对支架孔隙率的影响 | 第27-28页 |
2.3.7 支架材料的安全性评价 | 第28-29页 |
2.3.8 支架浸提液对神经干细胞分化的影响 | 第29-31页 |
2.3.9 支架与神经干细胞的相互作用 | 第31页 |
2.4 本章小结 | 第31-32页 |
第三章 海藻酸钙微凝胶纤维的制备及评价 | 第32-42页 |
3.1 引言 | 第32页 |
3.2 实验材料与方法 | 第32-35页 |
3.2.1 主要试剂与仪器 | 第32-33页 |
3.2.2 微凝胶纤维的制备 | 第33-34页 |
3.2.3 微凝胶纤维形貌的观察 | 第34页 |
3.2.4 不同条件对纤维形貌的影响 | 第34-35页 |
3.2.5 不同氯化钙浓度对海藻酸钙微凝胶纤维含水率的影响 | 第35页 |
3.3 结果与讨论 | 第35-41页 |
3.3.1 FT-IR分析 | 第35-36页 |
3.3.2 制备微凝胶纤维试验参数的优化 | 第36页 |
3.3.3 微凝胶纤维的表观形貌 | 第36-38页 |
3.3.4 不同条件对海藻酸钙微凝胶纤维的形貌的影响 | 第38-41页 |
3.3.5 海藻酸钙微凝胶纤维的含水率的测定 | 第41页 |
3.4 本章小结 | 第41-42页 |
第四章 壳聚糖/海藻酸钙/F-SAP微凝胶纤维的制备及应用 | 第42-50页 |
4.1 引言 | 第42-43页 |
4.2 实验材料与方法 | 第43-46页 |
4.2.1 实验材料与仪器 | 第43页 |
4.2.2 微凝胶纤维的制备 | 第43-44页 |
4.2.3 扫描电镜测试 | 第44页 |
4.2.4 细胞毒性 | 第44-45页 |
4.2.5 细胞免疫染色 | 第45-46页 |
4.3 结果与讨论 | 第46-49页 |
4.3.1 壳聚糖溶液作用时间对微凝胶纤维的溶胀的影响 | 第46页 |
4.3.2 壳聚糖/海藻酸钙/F-SAP微凝胶纤维的形貌 | 第46-47页 |
4.3.3 支架安全性评价 | 第47-48页 |
4.3.4 壳聚糖/海藻酸钙/F-SAP微凝胶纤维对神经干细胞分化的影响 | 第48-49页 |
4.4 本章小结 | 第49-50页 |
第五章 结论与展望 | 第50-52页 |
5.1 主要结论 | 第50页 |
5.2 展望 | 第50-52页 |
参考文献 | 第52-57页 |
在校期间发表论文和科研成果 | 第57-58页 |
致谢 | 第58页 |