| 摘要 | 第6-8页 |
| ABSTRACT | 第8-9页 |
| 第一章 文献综述 | 第12-22页 |
| 1.1 Mx 基因 | 第12-17页 |
| 1.1.1 Mx 基因的发现及结构 | 第12页 |
| 1.1.2 Mx 蛋白的细胞定位与抗病毒作用 | 第12-13页 |
| 1.1.3 Mx 蛋白的抗病毒机制 | 第13页 |
| 1.1.4 不同种类 Mx 基因的核苷酸及其氨基酸序列同源性 | 第13-14页 |
| 1.1.5 Mx 基因的研究进展 | 第14-15页 |
| 1.1.6 Mx 基因多态性研究 | 第15-16页 |
| 1.1.7 Mx 基因的研究价值 | 第16-17页 |
| 1.2 体细胞与乳房炎 | 第17-19页 |
| 1.2.1 乳房炎 | 第17-18页 |
| 1.2.2 体细胞数 | 第18页 |
| 1.2.3 体细胞数与乳房炎的关系 | 第18-19页 |
| 1.2.4 体细胞评分 | 第19页 |
| 1.2.5 体细胞评分关联基因研究进展 | 第19页 |
| 1.3 DNA 分子标记技术 | 第19-21页 |
| 1.3.1 限制性片段长度多态性 | 第20页 |
| 1.3.2 随机扩增多态性 DNA | 第20-21页 |
| 1.3.3 单核苷酸多态性 | 第21页 |
| 1.4 研究的目的意义 | 第21-22页 |
| 第二章 牦牛 Mx1 基因、黄牛 Mx1 和 Mx2 基因多态性分析 | 第22-32页 |
| 2.1 试验材料 | 第22页 |
| 2.1.1 试验样本 | 第22页 |
| 2.1.2 试验试剂及仪器 | 第22页 |
| 2.1.3 试剂和溶液的配制 | 第22页 |
| 2.2 试验方法 | 第22-25页 |
| 2.2.1 试验样本采集与保存 | 第22-23页 |
| 2.2.2 DNA 提取及浓度测定 | 第23页 |
| 2.2.3 引物设计与合成 | 第23-24页 |
| 2.2.4 特异性引物稀释 | 第24-25页 |
| 2.2.5 PCR 最佳反应条件优化 | 第25页 |
| 2.2.6 PCR 扩增和测序分析 | 第25页 |
| 2.3 数据分析 | 第25页 |
| 2.4 试验结果 | 第25-30页 |
| 2.4.1 基因组 DNA 的提取与检测 | 第25-26页 |
| 2.4.2 中国 12 个地方黄牛品种间 Mx1 基因外显子多态性分析 | 第26-27页 |
| 2.4.3 中国 12 个地方黄牛品种间 Mx2 基因外显子多态性分析 | 第27-29页 |
| 2.4.4 青海牦牛品种内 Mx1 基因外显子多态性分析 | 第29-30页 |
| 2.5 讨论 | 第30-32页 |
| 第三章 荷斯坦奶牛 Mx 基因多态性分析及其与 SCS 的相关性研究 | 第32-46页 |
| 3.1 试验样本 | 第32页 |
| 3.2 试验方法 | 第32-34页 |
| 3.2.1 试验样本采集与保存 | 第32页 |
| 3.2.2 DNA 提取及浓度测定 | 第32页 |
| 3.2.3 引物的设计与合成 | 第32页 |
| 3.2.4 PCR 扩增和测序分析 | 第32页 |
| 3.2.5 PCR-RFLP 分析 | 第32-33页 |
| 3.2.6 数据分析 | 第33-34页 |
| 3.3 试验结果 | 第34-44页 |
| 3.3.1 基因组 DNA 提取与检测 | 第34页 |
| 3.3.2 荷斯坦奶牛 Mx1 基因外显子多态性 | 第34-39页 |
| 3.3.3 荷斯坦奶牛 Mx2 基因外显子多态性 | 第39-42页 |
| 3.3.4 荷斯坦奶牛 Mx 基因外显子多态性与 SCS 的相关性分析 | 第42-44页 |
| 3.4 讨论 | 第44-46页 |
| 3.4.1 荷斯坦奶牛 Mx 基因多态性 | 第44-45页 |
| 3.4.2 荷斯坦奶牛 Mx 基因多态性与 SCS 的相关性分析 | 第45-46页 |
| 第四章 结论 | 第46-47页 |
| 参考文献 | 第47-51页 |
| 附录 | 第51-58页 |
| 附录一 试验所用试剂及仪器 | 第51-53页 |
| 附录二 DNA 的提取、琼脂糖检测和 DNA 纯化操作步骤 | 第53-56页 |
| 附录三 聚丙烯酰胺凝胶电泳（PAGE）详细操作步骤 | 第56-57页 |
| 附录四 遗传多样性分析模型 | 第57-58页 |
| 致谢 | 第58-59页 |
| 作者简介 | 第59页 |
