| 摘要 | 第3-5页 |
| ABSTRACT | 第5-7页 |
| 第1章 引言 | 第11-14页 |
| 第2章 材料与方法 | 第14-31页 |
| 2.1 实验材料 | 第14-15页 |
| 2.1.1 细胞 | 第14页 |
| 2.1.2 主要试剂及耗材 | 第14-15页 |
| 2.1.3 主要仪器 | 第15页 |
| 2.2 实验方法 | 第15-30页 |
| 2.2.1 器材的灭菌、去 RNA 酶处理 | 第15-16页 |
| 2.2.2 相关液体的配制 | 第16-17页 |
| 2.2.3 人脑膜瘤细胞的体外培养 | 第17-19页 |
| 2.2.4 人脑膜瘤细胞鉴定 | 第19-20页 |
| 2.2.5 Her2 shRNA 慢病毒载体的构建 | 第20-22页 |
| 2.2.6 Her2 shRNA 慢病毒感染人脑膜瘤细胞 | 第22-23页 |
| 2.2.7 RT-PCR 检测各组脑膜瘤细胞 Her mRNA 的表达 | 第23-26页 |
| 2.2.8 CCK-8 检测各组脑膜瘤细胞增殖的变化 | 第26页 |
| 2.2.9 Western blot 检测各组脑膜瘤细胞 Her2、Ki-67、VEGF 蛋白的表达 | 第26-29页 |
| 2.2.10 裸鼠成瘤实验 | 第29-30页 |
| 2.3 统计学分析 | 第30-31页 |
| 第3章 结果 | 第31-42页 |
| 3.1 人脑膜瘤细胞的生长特点 | 第31页 |
| 3.2 人脑膜瘤细胞的鉴定 | 第31-32页 |
| 3.2.1 人脑膜瘤细胞的免疫组化 | 第31-32页 |
| 3.2.2 人脑膜瘤组织的 FISH 检测 | 第32页 |
| 3.3 慢病毒转染效率的评价 | 第32-35页 |
| 3.3.1 慢病毒感染人脑膜瘤细胞最佳 MOI 值的确定 | 第32-33页 |
| 3.3.2 慢病毒感染人脑膜瘤细胞荧光表达情况 | 第33-35页 |
| 3.4 RT-PCR 检测各组脑膜瘤细胞 Her2 mRNA 的表达情况 | 第35-36页 |
| 3.5 CCK-8 检测各组脑膜瘤细胞的增殖 | 第36页 |
| 3.6 Western blot 检测各组细胞 Her2、Ki-67、VEGF 蛋白的表达 | 第36-38页 |
| 3.7 裸鼠移植瘤模型建立 | 第38-42页 |
| 3.7.1 裸鼠在不同时间点的体积变化 | 第38-39页 |
| 3.7.2 裸鼠在不同时间点的体重变化 | 第39-42页 |
| 第4章 讨论 | 第42-47页 |
| 4.1 培养人脑膜瘤细胞行之有效的方法 | 第42-43页 |
| 4.2 慢病毒转染 Her2/neu 基因对人脑膜瘤细胞增殖的影响 | 第43-44页 |
| 4.3 Her2/neu 基因促进脑膜瘤生长的机制 | 第44-45页 |
| 4.4 裸鼠移植瘤模型的建立 | 第45-47页 |
| 第5章 结论与展望 | 第47-48页 |
| 5.1 结论 | 第47页 |
| 5.2 存在的问题和展望 | 第47-48页 |
| 致谢 | 第48-49页 |
| 参考文献 | 第49-53页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第53-54页 |
| 综述 | 第54-65页 |
| 参考文献 | 第61-65页 |
