优化姜黄素纳米脂质体的制备及其体内外特性研究
| 英文缩略词 | 第8-9页 |
| 中文摘要 | 第9-11页 |
| Abstract | 第11-12页 |
| 第一部分 姜黄素纳米脂质体的制备及特性研究 | 第13-42页 |
| 前言 | 第13页 |
| 1.实验材料 | 第13-15页 |
| 1.1 实验材料与试剂 | 第13-14页 |
| 1.2 实验仪器与设备 | 第14-15页 |
| 1.3 实验细胞 | 第15页 |
| 2.实验方法 | 第15-25页 |
| 2.2 脂质体包封率测定 | 第16-17页 |
| 2.3 包封率的测定 | 第17页 |
| 2.4 脂质体制备方法筛选 | 第17-18页 |
| 2.5 单因素实验 | 第18-19页 |
| 2.6 正交优化试验优化脂质体处方 | 第19-20页 |
| 2.7 优化cur-np的制备 | 第20页 |
| 2.8 脂质体冷冻干燥 | 第20-21页 |
| 2.9 cur-np体外释放考察 | 第21-22页 |
| 2.10 cur-np理化特性的考察 | 第22页 |
| 2.11 细胞实验 | 第22-23页 |
| 2.12 HepG2细胞的摄取实验 | 第23页 |
| 2.13 MTT检测 | 第23-25页 |
| 2.14 统计学方法 | 第25页 |
| 3.实验结果 | 第25-40页 |
| 3.1 姜黄素的含量测定 | 第25-28页 |
| 3.2 脂质体包封率测定 | 第28页 |
| 3.3 脂质体制备方法筛选 | 第28-31页 |
| 3.4 正交优化试验优化脂质体处方 | 第31-32页 |
| 3.5 冻干保护剂种类选择 | 第32-33页 |
| 3.6 cur-np体外释放考察 | 第33-34页 |
| 3.7 cur-np的粒径及Zeta电位测定 | 第34-36页 |
| 3.8 HepG2细胞摄取试验 | 第36-37页 |
| 3.9 正常细胞毒性试验 | 第37-39页 |
| 3.11 不同浓度抗瘤效果考察 | 第39-40页 |
| 4.讨论 | 第40-42页 |
| 第二部分 姜黄素纳米脂质体的体内药动学研究 | 第42-50页 |
| 前言 | 第42-43页 |
| 1.实验材料 | 第43-44页 |
| 1.1 实验材料与试剂 | 第43页 |
| 1.2 实验仪器与设备 | 第43页 |
| 1.3 实验动物 | 第43-44页 |
| 2.实验方法 | 第44-46页 |
| 2.1 大鼠血浆中姜黄素的测定 | 第44页 |
| 2.2 色谱条件的确定 | 第44-45页 |
| 2.3 药动学实验 | 第45-46页 |
| 2.4 药动学参数计算 | 第46页 |
| 3.实验结果 | 第46-49页 |
| 3.1 方法专属性考察 | 第46-47页 |
| 3.2 精密度试验 | 第47页 |
| 3.3 回收率实验 | 第47-48页 |
| 3.4 稳定性试验 | 第48页 |
| 3.5 血药浓度曲线绘制 | 第48页 |
| 3.6 药动学参数计算 | 第48-49页 |
| 4.讨论 | 第49-50页 |
| 5.结论 | 第50页 |
| 参考文献 | 第50-55页 |
| 附录 | 第55-57页 |
| 致谢 | 第57-58页 |
| 综述 | 第58-68页 |
| 参考文献 | 第61-68页 |
