| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-8页 |
| 中英文对照及英文缩写词表 | 第9-14页 |
| 第一章 引言 | 第14-30页 |
| 1.1 AD的发病机制 | 第14-22页 |
| 1.1.1 Aβ 沉积假说 | 第14-16页 |
| 1.1.2 Tau蛋白过度磷酸化 | 第16页 |
| 1.1.3 氧化应激学说 | 第16-17页 |
| 1.1.4 炎症反应 | 第17-18页 |
| 1.1.5 细胞凋亡 | 第18-22页 |
| 1.2 治疗阿尔茨海默病的药物研究进展 | 第22-25页 |
| 1.2.1 胆碱酶抑制剂(ChEI) | 第22-24页 |
| 1.2.2 N-甲基-D-门冬氨酸(NMDA)受体阻断剂 | 第24页 |
| 1.2.3 抗氧化剂 | 第24页 |
| 1.2.4 非甾体抗炎药 | 第24页 |
| 1.2.5 钙离子拮抗剂 | 第24-25页 |
| 1.3 人参皂苷Rg2的功能 | 第25-28页 |
| 1.3.1 对心血管系统的作用 | 第25-26页 |
| 1.3.2 对中枢神经系统的作用 | 第26-28页 |
| 1.4 选题依据、目的及意义 | 第28-30页 |
| 第二章 人参皂苷Rg2保护Aβ_(25-35)诱导的PC12细胞损伤的作用 | 第30-45页 |
| 2.1 实验材料 | 第30-31页 |
| 2.1.1 实验细胞 | 第30页 |
| 2.1.2 实验药品 | 第30页 |
| 2.1.3 实验试剂 | 第30-31页 |
| 2.1.4 实验仪器 | 第31页 |
| 2.2 实验方法 | 第31-35页 |
| 2.2.1 Aβ_(25-35)对PC12细胞的影响 | 第31页 |
| 2.2.2 初步筛选出具有抗阿尔茨海默病活性的皂苷单体 | 第31-32页 |
| 2.2.3 人参皂苷Rg2保护Aβ_(25-35)诱导的PC12细胞损伤的作用 | 第32页 |
| 2.2.4 形态学观察 | 第32页 |
| 2.2.5 MTT法检测细胞活性 | 第32页 |
| 2.2.6 LDH细胞毒性检测 | 第32-33页 |
| 2.2.7 细胞内Ca~(2+)浓度检测 | 第33页 |
| 2.2.8 ROS检测 | 第33页 |
| 2.2.9 Annexin Ⅴ-FITC细胞凋亡检测 | 第33-34页 |
| 2.2.10 Caspase-3活性检测 | 第34页 |
| 2.2.11 统计学处理 | 第34-35页 |
| 2.3 实验结果 | 第35-42页 |
| 2.3.1 Aβ_(25-35)诱导PC12细胞损伤的结果 | 第35-36页 |
| 2.3.2 筛选具有抗阿尔茨海默病活性的皂苷单体 | 第36页 |
| 2.3.3 人参皂苷Rg2对Aβ_(25-35)损伤PC12细胞的保护作用 | 第36-38页 |
| 2.3.4 人参皂苷Rg2对Aβ_(25-35)诱导的PC12细胞LDH释放的影响 | 第38页 |
| 2.3.5 人参皂苷Rg2对Aβ_(25-35)诱导的PC12细胞内Ca~(2+)浓度([Ca~(2+)]i)的影响 | 第38页 |
| 2.3.6 人参皂苷Rg2对Aβ_(25-35)诱导的PC12细胞内ROS的影响 | 第38-40页 |
| 2.3.7 人参皂苷Rg2对Aβ_(25-35)诱导的PC12细胞凋亡的影响 | 第40-41页 |
| 2.3.8 人参皂苷Rg2对Aβ_(25-35)诱导的PC12细胞中caspase-3活性的影响 | 第41-42页 |
| 2.4 讨论 | 第42-44页 |
| 2.5 本章小结 | 第44-45页 |
| 第三章 人参皂苷Rg2保护Aβ_(25-35)诱导的PC12细胞损伤的机制研究 | 第45-60页 |
| 3.1 实验材料 | 第45-47页 |
| 3.1.1 实验细胞 | 第45页 |
| 3.1.2 实验药品 | 第45-46页 |
| 3.1.3 实验试剂 | 第46页 |
| 3.1.4 实验仪器 | 第46-47页 |
| 3.2 实验方法 | 第47-51页 |
| 3.2.1 实验分组 | 第47页 |
| 3.2.2 MTT法检测细胞活性 | 第47页 |
| 3.2.3 LDH细胞毒性检测 | 第47-48页 |
| 3.2.4 细胞内Ca~(2+)浓度检测 | 第48页 |
| 3.2.5 ROS检测 | 第48页 |
| 3.2.6 Caspase-3活性检测 | 第48-49页 |
| 3.2.7 BCA法蛋白含量测试 | 第49-50页 |
| 3.2.8 Western blot检测蛋白的表达 | 第50-51页 |
| 3.2.9 统计学处理 | 第51页 |
| 3.3 实验结果 | 第51-57页 |
| 3.3.1 人参皂苷Rg2对Aβ_(25-35)诱导的PC12细胞Bcl-2和Bax蛋白表达的影响 | 第51-52页 |
| 3.3.2 人参皂苷Rg2对Aβ_(25-35)诱导的PC12细胞Caspase-3蛋白表达的影响 | 第52页 |
| 3.3.3 人参皂苷Rg2对Aβ_(25-35)诱导的PC12细胞p-Akt的影响 | 第52-53页 |
| 3.3.4 PI3K/Akt信号通路对人参皂苷Rg2抑制Aβ_(25-35)的细胞毒性作用的影响 | 第53-56页 |
| 3.3.5 PI3K/Akt信号通路对凋亡相关蛋白的影响 | 第56-57页 |
| 3.4 讨论 | 第57-59页 |
| 3.5 本章小结 | 第59-60页 |
| 第四章 人参皂苷Rg2保护Aβ_(25-35)诱导的SD大鼠损伤的作用 | 第60-71页 |
| 4.1 实验材料 | 第60-61页 |
| 4.1.1 实验动物 | 第60页 |
| 4.1.2 实验药品 | 第60页 |
| 4.1.3 实验试剂 | 第60-61页 |
| 4.1.4 实验仪器 | 第61页 |
| 4.2 实验方法 | 第61-63页 |
| 4.2.1 实验分组 | 第61页 |
| 4.2.2 Aβ_(25-35)损伤大鼠的方法 | 第61-62页 |
| 4.2.3 行为学检测 | 第62页 |
| 4.2.4 形态学检测 | 第62-63页 |
| 4.2.5 统计学处理 | 第63页 |
| 4.3 实验结果 | 第63-69页 |
| 4.3.1 人参皂苷Rg2对Aβ_(25-35)诱导的SD大鼠定位航行能力的影响 | 第63-65页 |
| 4.3.2 人参皂苷Rg2对Aβ_(25-35)诱导的SD大鼠空间探索能力的影响 | 第65-67页 |
| 4.3.3 人参皂苷Rg2对海马注射Aβ_(25-35)致大鼠神经元损伤的影响 | 第67-69页 |
| 4.4 讨论 | 第69-70页 |
| 4.5 本章小结 | 第70-71页 |
| 第五章 人参皂苷Rg2保护Aβ_(25-35)诱导的SD大鼠的机制研究 | 第71-84页 |
| 5.1 实验材料 | 第71-72页 |
| 5.1.1 实验药品 | 第71页 |
| 5.1.2 实验试剂 | 第71-72页 |
| 5.1.3 实验仪器 | 第72页 |
| 5.2 实验方法 | 第72-76页 |
| 5.2.1 实验大鼠脑组织匀浆制备 | 第72页 |
| 5.2.2 BCA法蛋白含量测试 | 第72-73页 |
| 5.2.3 Western blot检测蛋白的表达 | 第73-74页 |
| 5.2.4 大鼠脑内单胺类神经递质及其代谢产物的研究 | 第74-76页 |
| 5.2.5 统计学 | 第76页 |
| 5.3 实验结果 | 第76-82页 |
| 5.3.1 人参皂苷Rg2对Aβ_(25-35)诱导的大鼠脑组织中Bcl-2和Bax蛋白表达的影响 | 第76-77页 |
| 5.3.2 人参皂苷Rg2对Aβ_(25-35)诱导的大鼠脑组织中Caspase-3蛋白表达的影响 | 第77-78页 |
| 5.3.3 人参皂苷Rg2对Aβ_(25-35)诱导的大鼠脑组织中p-Akt的影响 | 第78-79页 |
| 5.3.4 单胺类神经递质色谱-质谱分析结果 | 第79-82页 |
| 5.4 讨论 | 第82-83页 |
| 5.5 本章小结 | 第83-84页 |
| 论文总结 | 第84-86页 |
| 参考文献 | 第86-102页 |
| 致谢 | 第102-103页 |
| 在学期间公开发表论文情况 | 第103页 |
